<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Archiving and Interchange DTD v1.4 20241031//EN" "https://jats.nlm.nih.gov/archiving/1.4/JATS-archive-oasis-article1-4-mathml3.dtd">
<article xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xsi:noNamespaceSchemaLocation="https://jats.nlm.nih.gov/archiving/1.4/xsd/JATS-archive-oasis-article1-4-mathml3.xsd" article-type="review-article" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Клиническая и экспериментальная морфология</journal-title></journal-title-group><issn publication-format="print">2226-5988</issn><issn publication-format="electronic">2686-6749</issn><publisher><publisher-name xml:lang="ru">ООО &quot;Группа МДВ&quot;</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.31088/CEM2025.14.2.5-15</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Обзорная статья</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="ru">Роль клеток-супрессоров миелодного происхождения в противоопухолевом иммунном ответе</article-title></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-3800-1506</contrib-id><name><surname>Садыхов</surname><given-names>Николай Кязимович</given-names></name><bio><p>научный сотрудник группы молекулярной биологии и генетики с функциями биометрии, биомедицины и биомедицинской статистики референс-центра инфекционной и вирусной онкопатологии (Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»)</p></bio><email>drawnman@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-3386-7746</contrib-id><name><surname>Шахпазян</surname><given-names>Николай Константинович</given-names></name><bio><p>кандидат медицинских наук; заведующий группой молекулярной биологии и генетики с функциями биометрии, биомедицины и биомедицинской статистики референс-центра инфекционной и вирусной онкопатологии (Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»)</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-2052-914X</contrib-id><name><surname>Михалева</surname><given-names>Людмила Михайловна</given-names></name><bio><p>доктор медицинских наук, профессор; директор, заведующая лабораторией клинической морфологии (Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»)</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-1426-968X</contrib-id><name><surname>Мидибер</surname><given-names>Константин Юрьевич</given-names></name><bio><p>кандидат медицинских наук; заведующий группой патоморфологических и иммуногистохимических исследований референс-центра инфекционной и вирусной онкопатологии (Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»); ассистент кафедры патологической анатомии медицинского института (ФГАОУ ВО Российский университет дружбы народов имени Патриса Лумумбы)</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref><xref ref-type="aff" rid="aff2"></xref></contrib></contrib-group><aff id="aff1"><city>Москва</city><country>Россия</country><institution>Научно-исследовательский институт морфологии человека имени академика А.П. Авцына ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»</institution></aff><aff id="aff2"><city>Москва</city><country>Россия</country><institution>ФГАОУ ВО Российский университет дружбы народов имени Патриса Лумумбы</institution></aff><author-notes><fn fn-type="coi-statement"><p>Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.</p></fn></author-notes><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2025-03-31"><day>31</day><month>03</month><year>2025</year></pub-date><volume>14</volume><issue>2</issue><fpage>5</fpage><lpage>15</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2024-06-05"><day>05</day><month>06</month><year>2024</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2024-09-26"><day>26</day><month>09</month><year>2024</year></date></history><permissions><copyright-statement>© Садыхов Н. К., Шахпазян Н. К., Михалева Л. М., Мидибер К. Ю., 2025</copyright-statement><copyright-year>2025</copyright-year><copyright-holder>Садыхов Н. К., Шахпазян Н. К., Михалева Л. М., Мидибер К. Ю.</copyright-holder></permissions><self-uri xlink:href="http://cem-journal.ru/index.php/cem/article/view/305/256" xlink:title="URL">http://cem-journal.ru/index.php/cem/article/view/305/256</self-uri><abstract><p>Клетки-супрессоры миелодного происхождения (myeloid-derived suppressor cells, MDSCs) на данный момент являются одними из самых активно изучаемых участников микроокружения опухоли. Они играют важную роль в защите опухоли от иммунного ответа организма, участвуют в метастазировании и опухолевой прогрессии. Несмотря на изменения в понимании и классификации, что это за группа клеток, MDSCs по-прежнему описываются как иммуносупрессивные, подавляющие функции T-клеток, возникающие при условиях хронического воспаления и на поздних стадиях рака. В обзоре собраны последние данные литературы, касающиеся происхождения и функционирования MDSCs, рассмотрены основные механизмы их проопухолевой активности, включая влияние на иммунный ответ, ангиогенез, метаболизм опухоли, выделены перспективные направления дальнейшего изучения MDSCs как ключевого компонента опухолевой стромы.</p></abstract><kwd-group><kwd>миелоидные клетки-супрессоры (MDSCs)</kwd><kwd>воспаление</kwd><kwd>микроокружение опухоли</kwd><kwd>иммуносупрессия</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement>Работа выполнена при финансовой поддержке гранта № 23-25-00196 Российского научного фонда.</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body><p><bold>Введение</bold></p><p>Онкологические заболевания – сложная проблема здравоохранения мирового масштаба. Согласно статистике, они являются причиной каждой шестой смерти [1]. В 2022 году было зарегистрировано около 20 миллионов новых случаев рака и 9,7 миллиона смертей от рака. По оценкам, примерно у каждого пятого мужчины или женщины в течение жизни развивается рак, при этом примерно каждый девятый мужчина и каждая двенадцатая женщина умирают от него [2]. В настоящее время около 50% случаев онкологических заболеваний выявляется на поздней стадии, что приводит к ухудшению результатов лечения и увеличению показателей смертности [3]. Приведенная статистика подчеркивает необходимость поиска новых методов диагностики и лечения онкологических заболеваний.</p><p>Один из ключевых механизмов, изучение, которого может помочь в разработке новых методов борьбы с онкологическими заболеваниями, – взаимодействие опухоли и опухолевой стромы. Опухолевые клетки способны взаимодействовать с окружающими тканями, формируя строму, создающую благоприятное микроокружение для поддержки опухолевого роста [4]. Известно, что опухолевая строма многокомпонентна, в ее состав входят клетки различного происхождения, в том числе миелоидного (myeloid-derived suppressor cells, MDSCs), кровеносные и лимфатические сосуды, внеклеточный матрикс. Микроокружение опухоли (tumor microenvironment, TME) высвобождает множество гуморальных факторов, которые уже на уровне костного мозга изменяют нормальную дифференцировку миелоидных клеток, тем самым способствуя их превращению в MDSCs [5].</p><p>В настоящее время считается, что MDSCs играют одну из ключевых ролей в подавлении противоопухолевого иммунного ответа с помощью ряда механизмов, включая опосредованное и прямое воздействие на механизмы врожденного и адаптивного иммунитета. Также есть данные об активном участии этого вида клеток в процессах опухолевой прогрессии ангиогенеза и метаболического репрограммирования опухоли. Все это делает этот вид клеток опухолевого микроокружения актуальным и практически важным объектом изучения.</p><p><italic>Общая характеристика миелоидных клеток</italic><italic>-</italic><italic>супрессоров</italic></p><p>Миелоидные клетки-супрессоры (MDSCs) представляют собой функциональную гетерогенную субпопуляцию миелоидных клеток, обладающих иммуносупрессивными свойствами и формирующихся под влиянием микроокружения опухоли. В здоровых тканях они отсутствуют или находятся в незначительных количествах. У взрослого человека накапливаются в тканях при патологических состояниях, таких как опухоли и воспаление, однако интересно, что есть данные о значимой роли MDSCs в формировании нормального иммунитета у новорожденных в первые месяцы жизни [6, 7].</p><p>Выделяют две основные подгруппы MDSCs: моноцитарные (M-MDSCs) и полиморфноядерные, или гранулярные (PMN-MDSCs). PMN-MSDCs имеют общие фенотипические и морфологические признаки с нейтрофилами, тогда как M-MDSC похожи на моноциты и, подобно моноцитам, могут дифференцироваться в макрофаги [8]. Другая субпопуляция MDSCs, на которой отсутствуют маркеры макрофагов и гранулоцитов, называется MDSCs ранней стадии (e-MDSCs) [9]. Недавно также стали выделять субпопуляцию фиброцитарных MDSCs (F-MDSCs) которые впервые были выделены из клеток пуповинной крови [10–12]. Известно, что большинство MDSCs, обнаруживаемых в опухолях, являются PMN-MDSCs, на их долю приходится более 75%, при этом M-MDSCs составляют всего 10–20% [13, 14]. Несмотря на такую количественную разницу, есть данные свидетельствующие, что основной иммуносупрессивный эффект обусловлен M-MDSCs[15].</p><p>Недавнее исследование на мышах показывает, что субпопуляционный состав MDSCs в тканях зависит от пола [16]. У самцов мышей в отличие от самок выявлено повышенное содержание M-MDSCs в опухолевых тканях, а в периферической крови количество PMN-MDSCs было больше у самок.</p><p><bold> </bold></p><p><italic>Иммунофенотип MDSC</italic><italic>s</italic></p><p>Выделяют общие для всех субпопуляций MDSCs человека поверхностные маркеры, к которым относят CD45, CD11b, CD33. Для иммунофенотипирования и выявления субпопуляций применяют дополнительные маркеры. К примеру, M-MDSCs экспрессируют CD15 и CD66b, в то время как PMN-MDSCs экспрессируют CD14, lectin-type oxidized LDL рецептор 1 (LOX-1) и отличаются низкой экспрессией HLA-DR [17]. Кроме того, незрелые e-MDSCs характеризуются низкой экспрессией LIN, выраженной экспрессией CD117, CD34 [18]. Иммунофенотип F-MDSCs представлен экспрессией CD11b и CD11c, CD33, IL-Ra, CD13, CD86, CD40, коллагена V и α-SMA, другие исследователи определили экспрессию CD45, CD34, HLA-DR [10, 12]. Для всех MDSCs характерна выраженная экспрессия CD123, что позволяет их дифференцировать от морфологически сходных базофилов [19].</p><p>Недавно было показано, что lectin-type oxidized LDL receptor 1 (LOX-1) высоко экспрессируется на поверхности PMN-MDSCs человека, что позволяет отделять эти клетки от нейтрофилов в периферической крови и тканях [20]. В свою очередь, M-MDSCs, как и макрофаги, экспрессируют молекулы MHC класса II – HLA-DR, в отличие от моноцитов [21]. Данные об иммунофенотипе разных субпопуляций MDSC представлены в таблице.</p><p><italic>Механизмы иммуносупрессивного действия MDSC</italic><italic>s</italic></p><p>Как известно, основной биологической функцией, приписываемой MDSC в патологическом очаге, является иммуносупрессия [13].</p><p>Иммуносупрессорное действие MDSC связано с множеством факторов. К примеру, обе субпопуляции способны через экспрессию гена <italic>ARG</italic><italic>-</italic><italic>1</italic> синтезировать аргиназу, которая истощает аргинин из микроокружения опухоли. Это, в свою очередь, приводит к остановке клеточного цикла на фазе G0–G1 в Т-клетках, не давая им переходить в цитотоксические T-клетки [34–36]. Известно также, что имеется IDO-зависимый метаболизм триптофана, который является еще одним механизмом, используемым MDSCs для подавления иммунных реакций [37]. Индоламин 2,3-деоксигеназа (IDO) участвует в катаболизме триптофана, экспрессия этого фермента приводит к уменьшению триптофана и индуцирует экспансию регуляторных Т-клеток (Tregs), которые подавляют функцию цитотоксичесих Т-клеток. Также известным механизмом влияния MDSCs на иммунитет является экспрессия NADPH-оксидазы (Nox2) и NO-синтазы в большом количестве, что приводит к образованию активных форм кислорода (АФК) (например, O2− , H2O2) и NO.</p><p>При исследовании мышиных моделей рака молочной и поджелудочной железы выявлено, что межклеточные контакты между MDSC и естественными киллерами (NK-клетками) могут ингибировать IL-2-опосредованную активацию NK-клеток и выработку перфорина, снижая способность NK-клеток атаковать опухолевые клетки. MDSCs могут блокировать секрецию IFN-γ NK-клетками, а NO, продуцируемый MDSCs, дополнительно воздействует на рецептор NK Fc, ингибируя цитотоксичность NK-клеток [38, 39].</p><p>Кроме того, MDSCs способны оказывать непрямое иммуномодулирующее действие через влияние на ангиогенез, ремоделирование межклеточного матрикса и воздействия на воспалительные процессы. Обнаружено, что MDSCs выделяют матриксные металлопротеиназы (MMPs), факторы роста эндотелия сосудов (VEGF) и АФК [40]. Эти выделяемые молекулы, в частности, вызывают окислительный стресс окружающих клеток и через регуляцию ряда сигнальных путей, таких как MAPK, NF-κB, HIF-1, и факторов транскрипции, например AP-1, активируют провоспалительные гены [41].</p><p>Ряд цитокинов, которые секретируются MDSCs, также подавляет иммунный ответ: IL-6, IL-10, TGFβ и VEGF-A [36]. Кроме того, MDSC опосредуют развитие индуцируемых опухолью Tregs и Т-хелперных 17 клеток (Th17) [42]. Известно, что такая субпопуляция как F-MDSC может блокировать пролиферацию CD8 лимфоцитов и превращать CD4+ Т-клетки в супрессорные Treg-клетки, что согласуется с ролью MDSCs как иммуносупрессивных антиген-презентирующих клеток (АПК), контролирующих Т-клеточный иммунитет [12]. В отличие от других субпопуляций MDSCs F-MDSCs проявляют свою супрессивную активность не через L-аргинин-опосредованные пути, а по еще неустановленному механизму, предположительно основанному на поддержке Treg-клеток [12]. Есть исследования, свидетельствующие, что иммуносупрессорная функция F-MDSC требует непосредственного клеточного контакта с активированными Т-клетками [11].</p><p>В связи с высокой актуальностью исследования роли механизмов контрольных точек иммунитета в онкологии, интересно, что гипоксия через HIF-1α вызывает сверхэкспрессию PD-L1 у MDSCs как на уровне мРНК, так и на уровне трансляции [43].</p><p><italic>MDSC: путь от костного мозга до ткани</italic></p><p>Предшественники MDSCs, как и все клетки миелоидного ряда, появляются в результате миелопоэза, проходящего в костном мозге. Тем не менее нужно отметить, что в ряде случаев MDSCs при онкологических заболеваниях также могут происходить из селезенки или печени [44]. Установлено, что при онкологии костный мозг находится в состоянии хронического воспаления в связи с воздействием опухолевых факторов роста и цитокинов. Вследствие этого происходит нарушение экспрессии и функции факторов транскрипции генов, участвующих в дифференцировке клеток миелоидного ростка, что искажает дифференцировку клеток и генерирует предшественники MDSCs вместо классических предшественников моноцитов или гранулоцитов [45]. Предшественники MDSCs происходят от мультипотентных гематопоэтических стволовых клеток (HSCs). HSCs, в свою очередь, дифференцируются в общие миелоидные предшественники (CMPs), которые дифференцируются в предшественники миело- и моноцитопоэза (GMPs) и в последующем во весь спектр моноцитарных и гранулоцитарных клеток, в том числе MDSCs [46]. Есть данные, полученные на мышиной модели ряда опухолей, включая тимому, карциному легкого Льюиса, рак молочной железы, что подавление гена ретинобластомы (<italic>Rb1</italic>) посредством эпигенетических модификаций с участием гистондеацетилазы 2 (HDAC-2) способствовало преобразованию M-MDSCs в PMN-подобные клетки. Эти клетки обладают общими чертами PMN-MDSCs, включая иммуносупрессивную активность и высокую продукцию активных форм кислорода. Однако только подавление экспрессии <italic>Rb1</italic> в PMN-подобных клетках не показывает иммуносупрессивных свойств – требуется дополнительное влияние опухолевых клеток, или опухолевого микроокружения [47]. Эти же исследователи позже продемонстрировали, что у пациентов онкологического профиля PMN-MDSCs могут генерироваться из M-MDSCs через моноцитарноподобные предшественники гранулоцитов (MLPGs) и этот процесс также связан с низкой экспрессией <italic>Rb1</italic> [48].</p><p>В тканях MDSCs могут дифференцироваться следующим образом.</p><p>При наличии воспалительных факторов опухолевого происхождения M-MDSCs дифференцируются в иммуносупрессивные макрофаги (M2). В то же время при наличии HIF-1α в TME M-MDSCs могут дифференцироваться в ассоциированные с опухолью макрофаги (ТАМ) через STAT3 сигнальный путь [38, 49, 50].</p><p>MDSCs могут дифференцироваться в DCs, что было подемонстрировано на примере переноса MDSCs опухолевым реципиентам [50]. Другие исследователи также продемонстрировали, что в микроокружении опухоли M-MDSCs могут дифференцироваться в воспалительные дендритные клетки (Inf.DCs).</p><p>Есть данные, что PMN-MDSCs, попав в TME, способны дифференцироваться в ассоциированные с опухолью нейтрофилы (TAN) [33, 40, 46, 51, 52].</p><p>Моноциты здоровых людей могут превращаться в M-MDSCs при воздействии опухолевых клеток и микроокружения с высоким уровнем IL-10 или простагландина E2 (PGE2) [15]. Аналогичный механизм наблюдается при трансформации нейтрофилов в PMN-MDSCs [52].</p><p>Также после выхода из костного мозга мультипотентные гематопоэтические стволовые клетки могут превращаться в MDSC в селезенке, где может происходить экстрамедуллярный миелопоэз. Таким образом, возможно, что экспансия MDSC происходит во вторичных лимфоидных органах [53]. Стоит отметить, что дифференцировка M-MDSCs в макрофаги и дендритные клетки в лимфоидных тканях пациентов онкологического профидя ингибируется [40].</p><p>По классической теории принято, что формирование предшественников MDSCs в костном мозге происходит в два этапа: пролиферация и активация под воздействием факторов опухоли и самих MDSC [44, 54].</p><p>На этапе пролиферации происходит деление MDSCs, и за это отвечают факторы роста опухолевого происхождения, которые включают в себя гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор (GM-CSF), гранулоцитарный колониестимулирующий фактор (G-CSF), макрофагальный колониестимулирующий фактор (M-CSF), фактор роста эндотелия сосудов (VEGF), а некоторые исследователи выделяют и фактор стволовых клеток (SCF), IL-1, IL-3 [42, 45, 54, 55]. Эти факторы стимулируют миелопоэз и способствуют экспансии MDSCs в лимфоидных органах и микроокружении опухоли (TME) путем активации сигнальных путей JAK/STAT, PI3K/AKT/mTOR, Ras/Raf/Erk [56]. В частности, важную роль в этом процессе играют транскрипционные факторы/регуляторы STAT3, STAT5, IRF8, C/EBPβ, NOTCH [54, 56]. Однако нужно понимать, что не все опухоли продуцируют гемопоэтические факторы роста, и механизмы, регулирующие гемопоэз в опухолях этих типов, остаются неизвестными [45].</p><p>На втором этапе (активация) происходят функциональная активация MDSC и приобретение ими иммуносупрессивных свойств. Активация обусловливается в первую очередь факторами, продуцируемыми стромой опухоли и/или активированными Т-клетками, включающими как провоспалительные цитокины IFN-γ, IL-1β, так и противовоспалительные факторы IL-4, IL-13, PGE2 [46, 53, 57]. Сигнальные пути, участвующие в активации MDSCs, включают STAT6, Nuclear Factor-kB (NF-kB) и STAT1 [54, 55]. Краткая схема влияния факторов, выделяемых опухолью на развитие MDSCs, представлена на рисунке.</p><p>При онкологических заболеваниях в костном мозге под влиянием факторов роста опухоли патологически активируются предшественники миело- и моноцитопоэза (GMP) через STAT3, IRF8, C/EBPβ, в связи с чем нарушается дифференцировка моноцитарных и гранулоцитарных предшественников, что приводит к образованию M- и PMN-MDSCs. В опухоли и ее окружении под воздействием высокого уровня IL-10 и PGE2 моноциты способны превращаться в M-MDSCs. Подобным образом нейтрофилы трансформируются в PMN-MDSCs, которые могут дифференцироваться в ассоциированные с опухолью нейтрофилы (TANs). M-MDSCs также дифференцируются в микроокружении опухоли в Inf.DCs, M2 макрофаги под воздействием воспалительных факторов и при гипоксии в ассоциированные с опухолью макрофаги (TAMs).</p><p><italic>Роль MDSC</italic><italic>s</italic><italic> в метастазировании и ангиогенезе</italic></p><p>Опухоль выделяет хемотаксические молекулы в свое микроокружение. MDSCs имеют специфические рецепторы на поверхности, которые способны реагировать на эти сигналы. К хемотаксическим молекулам относится целый ряд веществ: семейство хемокинов С-Х-С, включающее CXCL1, CXCL8, CXCL12, семейство хемокинов C-C: CCL1, CCL2, CCL3, CCL5, CCL7. К рецепторам хемокинов причисляют CCR2, CCR5 и рецептор CXCR4 [58, 59]. Эти молекулы в высокой концентрации находятся в тканях, где встречаются MDSCs, включая TME и очаги воспаления. Кроме хемокинов и их рецепторов ряд молекул может вызывать хемотаксис и инфильтрацию MDSCs в опухолевые ткани: S100, VEGF, компонент комплемента C5a и CSF1.</p><p>Все субпопуляции MDSCs способствуют метастазированию через ремоделирование внеклеточного матрикса посредством выделения MMP-9, разрушающей коллаген IV типа [60], что позволяет опухолевым клеткам инфильтрировать ткани. Есть исследования, свидетельствующие о положительной корреляции между количеством выделяемой MDSCs ММP-9 и стадиями разных видов опухолей [61].</p><p>Известно, что PMN-MDSCs играют роль в метастазировании, формируя преметастатические ниши с участием рецепторов хемокинов CXCR2 и CXCR4 [37, 62]. Также накопление MDSCs в метастатических очагах происходит вследствие специфических хемотаксических путей (например, CCL2, M-CSF, CXCL2) [63]. Более того, установлено, что повышенная кислотность, характеризующая очаги воспаления, является одним из основных аттракторов миелоидных клеток, хотя молекулярные механизмы, лежащие в основе этого процесса, в настоящее время мало изучены [51].</p><p>Метастазирование опухолей невозможно без формирования новых сосудов – ангиогенеза. Известно, что способность MDSCs регулировать ангиогенез опухоли аналогична таковой у M2-TAM. MDSCs стимулируют и поддерживают ангиогенез опухоли главным образом за счет секреции MMPs (MMP-9). В частности, установлено, что MMP-9 усиливает ангиогенез и стимулирует новую сосудистую сеть опухоли благодаря увеличению биодоступности VEGF [59]. Показано, что количество MDSCs в опухоли положительно коррелирует с внутриопухолевой концентрацией VEGF [64]. В присутствии VEGF MDSCs могут создавать проангиогенную среду внутри опухолей путем секреции других ангиогенных факторов, включая CCL2, CXCL8, CXCL2, IL-1β, ANGPT1, ANGPT2 и GM-CSF [65]. Эти же факторы могут в дальнейшем формировать порочный круг, способствуя накоплению MDSCs в опухоли. Другим проангиогенным фактором MDSCs является экспрессия проопухолевого белка прокинетицина-2, также известного как Bv8, который играет важную роль в ангиогенезе, опосредуемом MDSCs [66, 67].</p><p>Семейство факторов VEGF, выделяемое MDSCs, кроме ангиогенеза также играет ключевую роль в подавлении иммунного ответа опухоли, негативно воздействуя на АПК и эффекторные Т-клетки, одновременно усиливая эффекты иммуносупрессивных клеток, таких как регуляторные Т-клетки (Treg). Связывание факторов VEGF с их рецепторами (главным образом VEGFR2) ингибирует дифференцировку моноцитов в дендритные клетки (DC), что способствует уклонению от иммунного ответа, блокируя презентацию опухолевых антигенов. Этот эффект опосредован ингибированием ядерного фактора NF-κB в DC, что также приводит к увеличению экспрессии PD-L1 на DC [68].</p><p>Таким образом, данные исследований позволяют предположить, что MDSCs играют важную роль в метастазировании опухолей через вовлечение хемокиновых механизмов рекрутинга и ремоделирования межклеточного матрикса и активное участие в неоангиогенезе.</p><p><italic>Метаболизм </italic><italic>MDSCs </italic></p><p>Быстрая пролиферация опухолевых клеток, ангиогенез и прочие механизмы требуют большого количества АТФ для удовлетворения биосинтетических и энергетических потребностей опухоли. Для этого опухолевые клетки перестраивают свой метаболизм в сторону анаэробного гликолиза даже в аэробных условиях, создавая эффект Варбурга [69]. В связи с этим происходит постоянная конкуренция за питательные вещества, в том числе между раковыми клетками и MDSCs. В конечном счете, MDSCs тоже начинают перестраивать свой метаболизм. Далее рассмотрены ключевые метаболические пути в MDSCs, которые принимают участие в формировании микроокружения опухоли и развитии воспалительных процессов.</p><p>MDSCs демонстрируют высокий уровень гликолитической активности, о чем свидетельствует увеличение уровня пируваткиназы в этих клетках. Более того, до 95% АТФ, вырабатываемой в MDSCs, зависит от гликолиза [70, 71]. MDSCs снижают потребление кислорода и зависящую от окислительного фосфорилирования продукцию АТФ на 60% в процессе их активации [72, 73]. Вклад пентозофосфатного пути как и окислительного фосфолирования остается на низком уровне, требуемом для обеспечении дальнейшего метаболизма L-аргенина [71].</p><p>Метаболиты, которые производятся во время гликолиза, способны защищать MDSCs от апоптоза, препятствуя выработке избыточных активных форм кислорода. К таким метаболитам относится фосфоенолпируват (PEP) являющийся антиоксидантом [74].</p><p>Увеличенное поглощение глюкозы опухолевыми клетками и MDSCs препятствует активации Т-клеток, поскольку активированным Т-клеткам требуется значительное количество глюкозы для последующей продукции эффекторных цитокинов. Если активные Т-клетки не способны использовать гликолиз, вследствие конкуренции за глюкозу с опухолевыми клетками и MDSCs, то их способность секретировать интерферон (IFN-γ) значительно снижается [75].</p><p>Другим метаболитом гликолиза является лактат, который играет важную роль в TME, он может стимулировать иммуносупрессивные свойства MDSCs [76, 77]. В подтверждение этого можно привести исследование, в котором нокаут лактатдегидрогеназы А, ключевого фермента гликолиза, приводит к снижению количества MDSCs в опухолевых тканях и селезенке [78]. Кроме того, лактат индуцирует снижение активности Т-лимфоцитов, предотвращая дифференцировку дендритных клеток, способствует поляризации М2 макрофагов в ассоциированные с опухолью макрофаги и увеличивает количество Treg лифоцитов [79]. К тому же лактат способен действовать как сигнальная молекула, участвующая в нескольких ключевых процессах – ангиогенезе, вызывая пролиферацию эндотелиальных клеток, миграцию и сборку сосудов, увеличении подвижности и миграции опухолевых клеток через индукцию экспрессии TGF-β2 [75].</p><p>Известно, что ассоциированные с опухолью MDSCs для получения энергии предпочитают переключаться на окисление жирных кислот (FAO) при участии липидного транспортера CD36 [80]. На мышиной модели аденокарциномы толстой кишки было показано, что проникающие в опухоль MDSCs демонстрируют повышенное поглощение жирных кислот и предпочитают использовать FAO в качестве основного источника АТФ [81]. В другом исследовании выявлена прямая корреляция между экспрессией генов, участвующих в процессе FAO (таких как <italic>CPT1</italic> и <italic>HADHA</italic>), и поглощением жирных кислот MDSCs, инфильтрирующих опухоль [82].</p><p>Продемонстрировано, что ингибирование FAO может не только блокировать иммуносупрессивную функцию MDSCs, восстанавливая противоопухолевую активность Т-клеток, но также снижает продукцию G-CSF, GM-CSF и IL-6 и способствует противоопухолевому иммунному ответу [83].</p><p>Недавнее исследование выявило повышенную активность белка переноса жирных кислот 2 (FATP2) в PMN-MDSCs в качестве критического регулятора иммуносупрессивной функции. Показано, что этот белок сверхэкспрессируется в PMN-MDSCs, но не экспрессируется в M-MDSCs мыши и человека [84]. FATP2 способствует накоплению арахидоновой кислоты в клетках, что приводит к увеличению синтеза простагландина E2 в PMN-MDSCs, тем самым повышая их иммуносупрессивную активность [84].</p><p>Подведем итоги. Дифференцировка, созревание и функции MDSCs могут зависеть от изменения метаболических путей этих клеток. Необходимы дальнейшие исследования по раскрытию механизмов различных метаболических путей на функции MDSCs. В частности, факторы, ответственные за переключение между OXPHOS, гликолизом и FAO в микроокружении опухоли, а также молекулярные механизмы, участвующие в метаболическом перепрограммировании MDSCs, до сих пор неизвестны.</p><p><bold>Заключение</bold></p><p>В обзоре раскрыт ряд механизмов MDSCs, которые участвуют в канцерогенезе и прогрессировании опухолей. Показано, что MDSCs обладают выраженным иммуносупрессивным действием, защищая опухолевые клетки от иммунной атаки хозяина.</p><p>Показано, что MDSCs принимают участие в метастазировании опухолей и ангиогенезе, что метаболиты этой группы клеток способны оказывать существенное влияние на развития опухоли.</p><p>Несмотря на выраженный прогресс в изучении, механизмы иммуносупрессорного действия MDSCs требуют дальнейших исследований. В частности, практически нет данных о механизмах влияния MDSCs на эффективность противоопухолевой иммунотерапии.</p><p>Дальнейшее изучение MDSCs позволит лучше понять их роль как в иммунном ответе организма в целом, так и в противоопухолевом иммунном ответе.</p></body><back><ref-list><ref id="ref1"><label>1</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Kaur R</italic>, <italic>Bhardwaj A</italic>, <italic>Gupta S</italic>. Cancer treatment therapies: traditional to modern approaches to combat cancers. Mol Biol Rep. 2023;50(11):9663–76. DOI: 10.1007/s11033-023-08809-3.</mixed-citation></ref><ref id="ref2"><label>2</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Bray</italic><italic> </italic><italic>F</italic><italic>, Laversanne M, Sung H, Ferlay J, Siegel RL, Soerjomataram I </italic><italic>et al</italic><italic>.</italic> Global cancer statistics 2022: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin; 2024;74(3):229-263. DOI: 10.3322/caac.21834.</mixed-citation></ref><ref id="ref3"><label>3</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Crosby D, Bhatia S, Brindle KM, Coussens LM, Dive C, Emberton M et al.</italic> Early detection of cancer. Science. 2022;375(6586):eaay9040. DOI: 10.1126/science.aay9040.</mixed-citation></ref><ref id="ref4"><label>4</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Xu M</italic>, <italic>Zhang T</italic>, <italic>Xia R</italic>, <italic>Wei Y</italic>, <italic>Wei X</italic>. Targeting the tumor stroma for cancer therapy. Mol Cancer. 2022;21(1):208. DOI: 10.1186/s12943-022-01670-1.</mixed-citation></ref><ref id="ref5"><label>5</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Zhu S, Zhang T, Zheng L, Liu H, Song W, Liu D et al.</italic> Combination strategies to maximize the benefits of cancer immunotherapy. J Hematol Oncol. 2021;14(1):156. DOI: 10.1186/s13045-021-01164-5.</mixed-citation></ref><ref id="ref6"><label>6</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Jablonska J</italic>, <italic>Brandau S</italic>. PMN-MDSC in newborns: regulation of the regulators. J Leukoc Biol. 2022;112(5):949–50. DOI: 10.1002/JLB.3CE0522-283R.</mixed-citation></ref><ref id="ref7"><label>7</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Zhou J</italic>, <italic>Nefedova Y</italic>, <italic>Lei A</italic>, <italic>Gabrilovich D</italic>. Neutrophils and PMN-MDSC: their biological role and interaction with stromal cells. Semin Immunol. 2018;35:19–28. DOI: 10.1016/j.smim.2017.12.004.</mixed-citation></ref><ref id="ref8"><label>8</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Hegde S</italic>, <italic>Leader AM</italic>, <italic>Merad M</italic>. MDSC: markers, development, states, and unaddressed complexity. Immunity. 2021;54(5):875–84. DOI: 10.1016/j.immuni.2021.04.004.</mixed-citation></ref><ref id="ref9"><label>9</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Li K, Shi H, Zhang B, Ou X, Ma Q, Chen Y et al.</italic> Myeloid-derived suppressor cells as immunosuppressive regulators and therapeutic targets in cancer. Signal Transduct Target Ther. 2021;6(1):362. DOI: 10.1038/s41392-021-00670-9.</mixed-citation></ref><ref id="ref10"><label>10</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Zhang H, Maric I, DiPrima MJ, Khan J, Orentas RJ, Kaplan RN et al.</italic> Fibrocytes represent a novel MDSC subset circulating in patients with metastatic cancer. Blood. 2013;122(7):1105–13. DOI: 10.1182/blood-2012-08-449413.</mixed-citation></ref><ref id="ref11"><label>11</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Mazza EM, Zoso A, Mandruzzato S, Bronte V, Serafini P, Inverardi L et al.</italic> Gene expression profiling of human fibrocytic myeloid-derived suppressor cells (f-MDSCs). Genom Data. 2014;2:389–92. DOI: 10.1016/j.gdata.2014.10.018.</mixed-citation></ref><ref id="ref12"><label>12</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Zoso A, Mazza EM, Bicciato S, Mandruzzato S, Bronte V, Serafini P et al.</italic> Human fibrocytic myeloid-derived suppressor cells express IDO and promote tolerance via Treg-cell expansion. Eur J Immunol. 2014;44(11):3307–19. DOI: 10.1002/eji.201444522.</mixed-citation></ref><ref id="ref13"><label>13</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Cassetta L, Bruderek K, Skrzeczynska-Moncznik J, Osiecka O, Hu X, Rundgren IM et al.</italic> Differential expansion of circulating human MDSC subsets in patients with cancer, infection and inflammation. J Immunother Cancer. 2020;8(2):e001223. DOI: 10.1136/jitc-2020-001223.</mixed-citation></ref><ref id="ref14"><label>14</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Youn JI</italic>, <italic>Nagaraj S</italic>, <italic>Collazo M</italic>, <italic>Gabrilovich DI</italic>. Subsets of myeloid-derived suppressor cells in tumor-bearing mice. J Immunol. 2008;181(8):5791–802. DOI: 10.4049/jimmunol.181.8.5791.</mixed-citation></ref><ref id="ref15"><label>15</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Yaseen MM</italic>, <italic>Abuharfeil NM</italic>, <italic>Darmani H</italic>, <italic>Daoud A</italic>. Mechanisms of immune suppression by myeloid-derived suppressor cells: the role of interleukin-10 as a key immunoregulatory cytokine. Open Biol. 2020;10(9):200111. DOI: 10.1098/rsob.200111.</mixed-citation></ref><ref id="ref16"><label>16</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Bayik D, Zhou Y, Park C, Hong C, Vail D, Silver DJ et al.</italic> Myeloid-derived suppressor cell subsets drive glioblastoma growth in a sex-specific manner. Cancer Discov. 2020;10(8):1210–25. DOI: 10.1158/2159-8290.CD-19-1355.</mixed-citation></ref><ref id="ref17"><label>17</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Abrams SI</italic>. Developmental pathways of myeloid-derived suppressor cells in neoplasia. Cell Immunol. 2021;360:104261. DOI: 10.1016/j.cellimm.2020.104261.</mixed-citation></ref><ref id="ref18"><label>18</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Ugel S</italic>, <italic>De Sanctis F</italic>, <italic>Mandruzzato S</italic>, <italic>Bronte V</italic>. Tumor-induced myeloid deviation: when myeloid-derived suppressor cells meet tumor-associated macrophages. J Clin Invest. 2015;125(9):3365–76. DOI: 10.1172/JCI80006.</mixed-citation></ref><ref id="ref19"><label>19</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Khan ANH, Emmons TR, Wong JT, Alqassim E, Singel KL, Mark J et al.</italic> Quantification of early-stage myeloid-derived suppressor cells in cancer requires excluding basophils. Cancer Immunol Res. 2020;8(6):819–28. DOI: 10.1158/2326-6066.CIR-19-0556.</mixed-citation></ref><ref id="ref20"><label>20</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Condamine T, Dominguez GA, Youn JI, Kossenkov AV, Mony S, Alicea-Torres K et al.</italic> Lectin-type oxidized LDL receptor-1 distinguishes population of human polymorphonuclear myeloid-derived suppressor cells in cancer patients. Sci Immunol. 2016;1(2):aaf8943. DOI: 10.1126/sciimmunol.aaf8943.</mixed-citation></ref><ref id="ref21"><label>21</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Gabrilovich DI</italic>. Myeloid-derived suppressor cells. Cancer Immunol Res. 2017;5(1):3–8. DOI: 10.1158/2326-6066.CIR-16-0297.</mixed-citation></ref><ref id="ref22"><label>22</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Zhang W, Fang X, Gao C, Song C, He Y, Zhou T et al.</italic> MDSCs in sepsis-induced immunosuppression and its potential therapeutic targets. Cytokine Growth Factor Rev. 2023;69:90–103. DOI: 10.1016/j.cytogfr.2022.07.007.</mixed-citation></ref><ref id="ref23"><label>23</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Ochando J</italic>, <italic>Conde P</italic>, <italic>Utrero-Rico A</italic>, <italic>Paz-Artal E</italic>. Tolerogenic role of myeloid suppressor cells in organ transplantation. Front Immunol. 2019;10:374. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00374.</mixed-citation></ref><ref id="ref24"><label>24</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Giannotta C</italic>, <italic>Autino F</italic>, <italic>Massaia M</italic>. The immune suppressive tumor microenvironment in multiple myeloma: the contribution of myeloid-derived suppressor cells. Front Immunol. 2023;13:1102471. DOI: 10.3389/fimmu.2022.1102471.</mixed-citation></ref><ref id="ref25"><label>25</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Stip MC</italic>, <italic>Teeuwen L</italic>, <italic>Dierselhuis MP</italic>, <italic>Leusen JHW</italic>, <italic>Krijgsman D</italic>. Targeting the myeloid microenvironment in neuroblastoma. J Exp Clin Cancer Res. 2023;42(1):337. DOI: 10.1186/s13046-023-02913-9.</mixed-citation></ref><ref id="ref26"><label>26</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Zhao Y</italic>, <italic>Du J</italic>, <italic>Shen X</italic>. Targeting myeloid-derived suppressor cells in tumor immunotherapy: current, future and beyond. Front Immunol. 2023;14:1157537. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1157537.</mixed-citation></ref><ref id="ref27"><label>27</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Li T, Liu T, Zhu W, Xie S, Zhao Z, Feng B et al.</italic> Targeting MDSC for immune-checkpoint blockade in cancer immunotherapy: current progress and new prospects. Clin Med Insights Oncol. 2021;15:11795549211035540. DOI: 10.1177/11795549211035540.</mixed-citation></ref><ref id="ref28"><label>28</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Han X, Song X, Xiao Z, Zhu G, Gao R, Ni B et al.</italic> Study on the mechanism of MDSC-platelets and their role in the breast cancer microenvironment. Front Cell Dev Biol. 2024;12:1310442. DOI: 10.3389/fcell.2024.1310442.</mixed-citation></ref><ref id="ref29"><label>29</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Schrijver IT</italic>, <italic>Théroude C</italic>, <italic>Roger T</italic>. Myeloid-derived suppressor cells in sepsis. Front Immunol. 2019;10:327. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00327.</mixed-citation></ref><ref id="ref30"><label>30</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Zhang H</italic>, <italic>Li QW</italic>, <italic>Li YY</italic>, <italic>Tang X</italic>, <italic>Gu L</italic>, <italic>Liu HM</italic>. Myeloid-derived suppressor cells and pulmonary hypertension. Front Immunol. 2023;14:1189195. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1189195.</mixed-citation></ref><ref id="ref31"><label>31</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Ozbay Kurt FG</italic>, <italic>Lasser S</italic>, <italic>Arkhypov I</italic>, <italic>Utikal J</italic>, <italic>Umansky V</italic>. Enhancing immunotherapy response in melanoma: myeloid-derived suppressor cells as a therapeutic target. J Clin Invest. 2023;133(13):e170762. DOI: 10.1172/JCI170762.</mixed-citation></ref><ref id="ref32"><label>32</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Veglia F</italic>, <italic>Perego M</italic>, <italic>Gabrilovich D</italic>. Myeloid-derived suppressor cells coming of age. Nat Immunol. 2018;19(2):108–19. DOI: 10.1038/s41590-017-0022-x.</mixed-citation></ref><ref id="ref33"><label>33</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Liu X, Zhao S, Sui H, Liu H, Yao M, Su Y et al.</italic> MicroRNAs/LncRNAs modulate MDSCs in tumor microenvironment. Front Oncol. 2022;12:772351. DOI: 10.3389/fonc.2022.772351.</mixed-citation></ref><ref id="ref34"><label>34</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Groth C, Hu X, Weber R, Fleming V, Altevogt P, Utikal J et al.</italic> Immunosuppression mediated by myeloid-derived suppressor cells (MDSCs) during tumour progression. Br J Cancer. 2019;120(1):16–25. DOI: 10.1038/s41416-018-0333-1.</mixed-citation></ref><ref id="ref35"><label>35</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Ma J</italic>, <italic>Xu H</italic>, <italic>Wang S</italic>. Immunosuppressive role of myeloid-derived suppressor cells and therapeutic targeting in lung cancer. J Immunol Res. 2018;2018:6319649. DOI: 10.1155/2018/6319649.</mixed-citation></ref><ref id="ref36"><label>36</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Cui C</italic>, <italic>Lan P</italic>, <italic>Fu L</italic>. The role of myeloid-derived suppressor cells in gastrointestinal cancer. Cancer Commun (Lond). 2021;41(6):442–71. DOI: 10.1002/cac2.12156.</mixed-citation></ref><ref id="ref37"><label>37</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Veglia F</italic>, <italic>Sanseviero E</italic>, <italic>Gabrilovich DI</italic>. Myeloid-derived suppressor cells in the era of increasing myeloid cell diversity. Nat Rev Immunol. 2021;21(8):485–98. DOI: 10.1038/s41577-020-00490-y.</mixed-citation></ref><ref id="ref38"><label>38</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Ma T, Renz BW, Ilmer M, Koch D, Yang Y, Werner J et al.</italic> Myeloid-derived suppressor cells in solid tumors. Cells. 2022;11(2):310. DOI: 10.3390/cells11020310.</mixed-citation></ref><ref id="ref39"><label>39</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Stiff A, Trikha P, Mundy-Bosse B, McMichael E, Mace T, Benner B et al.</italic> Nitric oxide production by myeloid-derived suppressor cells plays a role in impairing Fс receptor-mediated natural killer cell function. Clin Cancer Res. 2018;24(8):1891–904. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-17-0691.</mixed-citation></ref><ref id="ref40"><label>40</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Kumar V</italic>, <italic>Patel S</italic>, <italic>Tcyganov E</italic>, <italic>Gabrilovich DI</italic>. The nature of myeloid-derived suppressor cells in the tumor microenvironment. Trends Immunol. 2016;37(3):208–20. DOI: 10.1016/j.it.2016.01.004.</mixed-citation></ref><ref id="ref41"><label>41</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Sanchez-Pino MD</italic>, <italic>Dean MJ</italic>, <italic>Ochoa AC</italic>. Myeloid-derived suppressor cells (MDSC): when good intentions go awry. Cell Immunol. 2021;362:104302. DOI: 10.1016/j.cellimm.2021.104302.</mixed-citation></ref><ref id="ref42"><label>42</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Al-Mterin MA</italic>, <italic>Elkord E</italic>. Myeloid-derived suppressor cells in colorectal cancer: prognostic biomarkers and therapeutic targets. Explor Target Antitumor Ther. 2022;3(4):497–510. DOI: 10.37349/etat.2022.00097.</mixed-citation></ref><ref id="ref43"><label>43</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Noman MZ, Desantis G, Janji B, Hasmim M, Karray S, Dessen P et al.</italic> PD-L1 is a novel direct target of HIF-1α, and its blockade under hypoxia enhanced MDSC-mediated T cell activation. J Exp Med. 2014;211(5):781–90. DOI: 10.1084/jem.20131916.</mixed-citation></ref><ref id="ref44"><label>44</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Grover A</italic>, <italic>Sanseviero E</italic>, <italic>Timosenko E</italic>, <italic>Gabrilovich DI</italic>. Myeloid-derived suppressor cells: a propitious road to clinic. Cancer Discov. 2021;11(11):2693–706. DOI: 10.1158/2159-8290.CD-21-0764.</mixed-citation></ref><ref id="ref45"><label>45</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Al Sayed MF, Amrein MA, Bührer ED, Huguenin AL, Radpour R, Riether C et al.</italic> T-cell-secreted TNFα induces emergency myelopoiesis and myeloid-derived suppressor cell differentiation in cancer. Cancer Res. 2019;79(2):346–59. DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-17-3026.</mixed-citation></ref><ref id="ref46"><label>46</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Law AMK</italic>, <italic>Valdes-Mora F</italic>, <italic>Gallego-Ortega D</italic>. Myeloid-derived suppressor cells as a therapeutic target for cancer. Cells. 2020;9(3):561. DOI: 10.3390/cells9030561.</mixed-citation></ref><ref id="ref47"><label>47</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Youn JI, Kumar V, Collazo M, Nefedova Y, Condamine T, Cheng P et al.</italic> Epigenetic silencing of retinoblastoma gene regulates pathologic differentiation of myeloid cells in cancer. Nat Immunol. 2013;14(3):211–20. DOI: 10.1038/ni.2526.</mixed-citation></ref><ref id="ref48"><label>48</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Mastio J, Condamine T, Dominguez G, Kossenkov AV, Donthireddy L, Veglia F et al.</italic> Identification of monocyte-like precursors of granulocytes in cancer as a mechanism for accumulation of PMN-MDSCs. J Exp Med. 2019;216(9):2150–69. DOI: 10.1084/jem.20181952.</mixed-citation></ref><ref id="ref49"><label>49</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Li K, Shi H, Zhang B, Ou X, Ma Q, Chen Y et al.</italic> Myeloid-derived suppressor cells as immunosuppressive regulators and therapeutic targets in cancer. Signal Transduct Target Ther. 2021;6(1):362. DOI: 10.1038/s41392-021-00670-9.</mixed-citation></ref><ref id="ref50"><label>50</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Gabrilovich DI</italic>, <italic>Ostrand-Rosenberg S</italic>, <italic>Bronte V</italic>. Coordinated regulation of myeloid cells by tumours. Nat Rev Immunol. 2012;12(4):253–68. DOI: 10.1038/nri3175.</mixed-citation></ref><ref id="ref51"><label>51</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Huber V, Camisaschi C, Berzi A, Ferro S, Lugini L, Triulzi T et al.</italic> Cancer acidity: an ultimate frontier of tumor immune escape and a novel target of immunomodulation. Semin Cancer Biol. 2017;43:74–89. DOI: 10.1016/j.semcancer.2017.03.001.</mixed-citation></ref><ref id="ref52"><label>52</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Suszczyk D</italic>, <italic>Skiba W</italic>, <italic>Jakubowicz-Gil J</italic>, <italic>Kotarski J</italic>, <italic>Wertel I</italic>. The role of myeloid-derived suppressor cells (MDSCs) in the development and/or progression of endometriosis – state of the art. Cells. 2021;10(3):677. DOI: 10.3390/cells10030677.</mixed-citation></ref><ref id="ref53"><label>53</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Fresno M</italic>, <italic>Gironès N</italic>. Myeloid-derived suppressor cells in <italic>Trypanosoma cruzi</italic> infection. Front Cell Infect Microbiol. 2021;11:737364. DOI: 10.3389/fcimb.2021.737364.</mixed-citation></ref><ref id="ref54"><label>54</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>De Cicco P</italic>, <italic>Ercolano G</italic>, <italic>Ianaro A</italic>. The new era of cancer immunotherapy: targeting myeloid-derived suppressor cells to overcome immune evasion. Front Immunol. 2020;11:1680. DOI: 10.3389/fimmu.2020.01680.</mixed-citation></ref><ref id="ref55"><label>55</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Wu Y</italic>, <italic>Yi M</italic>, <italic>Niu M</italic>, <italic>Mei Q</italic>, <italic>Wu K</italic>. Myeloid-derived suppressor cells: an emerging target for anticancer immunotherapy. Mol Cancer. 2022;21(1):184. DOI: 10.1186/s12943-022-01657-y.</mixed-citation></ref><ref id="ref56"><label>56</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Kramer ED</italic>, <italic>Abrams SI</italic>. Granulocytic myeloid-derived suppressor cells as negative regulators of anticancer immunity. Front Immunol. 2020;11:1963. DOI: 10.3389/fimmu.2020.01963.</mixed-citation></ref><ref id="ref57"><label>57</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Yin K</italic>, <italic>Xia X</italic>, <italic>Rui K</italic>, <italic>Wang T</italic>, <italic>Wang S</italic>. Myeloid-derived suppressor cells: a new and pivotal player in colorectal cancer progression. Front Oncol. 2020;10:610104. DOI: 10.3389/fonc.2020.610104.</mixed-citation></ref><ref id="ref58"><label>58</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Nakamura K</italic>, <italic>Smyth MJ</italic>. Myeloid immunosuppression and immune checkpoints in the tumor microenvironment. Cell Mol Immunol. 2020;17(1):1–12. DOI: 10.1038/s41423-019-0306-1.</mixed-citation></ref><ref id="ref59"><label>59</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Mabuchi S</italic>, <italic>Sasano T</italic>, <italic>Komura N</italic>. Targeting myeloid-derived suppressor cells in ovarian cancer. Cells. 2021;10(2):329. DOI: 10.3390/cells10020329.</mixed-citation></ref><ref id="ref60"><label>60</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Pego ER</italic>, <italic>Fernández I</italic>, <italic>Núñez MJ</italic>. Molecular basis of the effect of MMP-9 on the prostate bone metastasis: a review. Urol Oncol. 2018;36(6):272–82. DOI: 10.1016/j.urolonc.2018.03.009.</mixed-citation></ref><ref id="ref61"><label>61</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Rashid ZA</italic>, <italic>Bardaweel SK</italic>. Novel matrix metalloproteinase-9 (MMP-9) inhibitors in cancer treatment. Int J Mol Sci. 2023;24(15):12133. DOI: 10.3390/ijms241512133.</mixed-citation></ref><ref id="ref62"><label>62</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Wang Y</italic>, <italic>Ding Y</italic>, <italic>Guo N</italic>, <italic>Wang S</italic>. MDSCs: key criminals of tumor pre-metastatic niche formation. Front Immunol. 2019;10:172. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00172.</mixed-citation></ref><ref id="ref63"><label>63</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Sica A</italic>, <italic>Guarneri V</italic>, <italic>Gennari A</italic>. Myelopoiesis, metabolism and therapy: a crucial crossroads in cancer progression. Cell Stress. 2019;3(9):284–94. DOI: 10.15698/cst2019.09.197.</mixed-citation></ref><ref id="ref64"><label>64</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Karakhanova S, Link J, Heinrich M, Shevchenko I, Yang Y, Hassenpflug M et al.</italic> Characterization of myeloid leukocytes and soluble mediators in pancreatic cancer: importance of myeloid-derived suppressor cells. Oncoimmunology. 2015;4(4):e998519. DOI: 10.1080/2162402X.2014.998519.</mixed-citation></ref><ref id="ref65"><label>65</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Chun E, Lavoie S, Michaud M, Gallini CA, Kim J, Soucy G et al.</italic> CCL2 promotes colorectal carcinogenesis by enhancing polymorphonuclear myeloid-derived suppressor cell population and function. Cell Rep. 2015;12(2):244–57. DOI: 10.1016/j.celrep.2015.06.024.</mixed-citation></ref><ref id="ref66"><label>66</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Lugano R</italic>, <italic>Ramachandran M</italic>, <italic>Dimberg A</italic>. Tumor angiogenesis: causes, consequences, challenges and opportunities. Cell Mol Life Sci. 2020;77(9):1745–70. DOI: 10.1007/s00018-019-03351-7.</mixed-citation></ref><ref id="ref67"><label>67</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Li X, Chang E, Cui J, Zhao H, Hu C, O’Dea KP et al.</italic> Bv8 mediates myeloid cell migration and enhances malignancy of colorectal cancer. Front Immunol. 2023;14:1158045. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1158045.</mixed-citation></ref><ref id="ref68"><label>68</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Rahma OE</italic>, <italic>Hodi FS</italic>. The intersection between tumor angiogenesis and immune suppression. Clin Cancer Res. 2019;25(18):5449–57. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-18-1543.</mixed-citation></ref><ref id="ref69"><label>69</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Liberti MV</italic>, <italic>Locasale JW</italic>. The Warburg effect: how does it benefit cancer cells? Trends Biochem Sci. 2016;41(3):211–8. DOI: 10.1016/j.tibs.2015.12.001.</mixed-citation></ref><ref id="ref70"><label>70</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Hu C</italic>, <italic>Pang B</italic>, <italic>Lin G</italic>, <italic>Zhen Y</italic>, <italic>Yi H</italic>. Energy metabolism manipulates the fate and function of tumour myeloid-derived suppressor cells. Br J Cancer. 2020;122(1):23–9. DOI: 10.1038/s41416-019-0644-x.</mixed-citation></ref><ref id="ref71"><label>71</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Goffaux G</italic>, <italic>Hammami I</italic>, <italic>Jolicoeur M</italic>. A dynamic metabolic flux analysis of myeloid-derived suppressor cells confirms immunosuppression-related metabolic plasticity. Sci Rep. 2017;7(1):9850. DOI: 10.1038/s41598-017-10464-1.</mixed-citation></ref><ref id="ref72"><label>72</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Cai TT, Ye SB, Liu YN, He J, Chen QY, Mai HQ et al.</italic> LMP1-mediated glycolysis induces myeloid-derived suppressor cell expansion in nasopharyngeal carcinoma. PLoS Pathog. 2017;13(7):e1006503. DOI: 10.1371/journal.ppat.1006503.</mixed-citation></ref><ref id="ref73"><label>73</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Hammami I</italic>, <italic>Chen J</italic>, <italic>Murschel F</italic>, <italic>Bronte V</italic>, <italic>De Crescenzo G</italic>, <italic>Jolicoeur M</italic>. Immunosuppressive activity enhances central carbon metabolism and bioenergetics in myeloid-derived suppressor cells in vitro models. BMC Cell Biol. 2012;13:18. DOI: 10.1186/1471-2121-13-18.</mixed-citation></ref><ref id="ref74"><label>74</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Jian SL, Chen WW, Su YC, Su YW, Chuang TH, Hsu SC et al.</italic> Glycolysis regulates the expansion of myeloid-derived suppressor cells in tumor-bearing hosts through prevention of ROS-mediated apoptosis. Cell Death Dis. 2017;8(5):e2779. DOI: 10.1038/cddis.2017.192.</mixed-citation></ref><ref id="ref75"><label>75</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Di Ianni N</italic>, <italic>Musio S</italic>, <italic>Pellegatta S</italic>. Altered metabolism in glioblastoma: myeloid-derived suppressor cell (MDSC) fitness and tumor-infiltrating lymphocyte (TIL) dysfunction. Int J Mol Sci. 2021;22(9):4460. DOI: 10.3390/ijms22094460.</mixed-citation></ref><ref id="ref76"><label>76</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Husain Z</italic>, <italic>Huang Y</italic>, <italic>Seth P</italic>, <italic>Sukhatme VP</italic>. Tumor-derived lactate modifies antitumor immune response: effect on myeloid-derived suppressor cells and NK cells. J Immunol. 2013;191(3):1486–95. DOI: 10.4049/jimmunol.1202702.</mixed-citation></ref><ref id="ref77"><label>77</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Salminen A</italic>, <italic>Kauppinen A</italic>, <italic>Kaarniranta K</italic>. AMPK activation inhibits the functions of myeloid-derived suppressor cells (MDSC): impact on cancer and aging. J Mol Med (Berl). 2019;97(8):1049–64. DOI: 10.1007/s00109-019-01795-9.</mixed-citation></ref><ref id="ref78"><label>78</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Li W, Tanikawa T, Kryczek I, Xia H, Li G, Wu K et al.</italic> Aerobic glycolysis controls myeloid-derived suppressor cells and tumor immunity via a specific CEBPB isoform in triple-negative breast cancer. Cell Metab. 2018;28(1):87–103.e6. DOI: 10.1016/j.cmet.2018.04.022.</mixed-citation></ref><ref id="ref79"><label>79</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Comito G, Iscaro A, Bacci M, Morandi A, Ippolito L, Parri M et al.</italic> Lactate modulates CD4+ T-cell polarization and induces an immunosuppressive environment, which sustains prostate carcinoma progression via TLR8/miR21 axis. Oncogene. 2019;38(19):3681–95. DOI: 10.1038/s41388-019-0688-7.</mixed-citation></ref><ref id="ref80"><label>80</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Yan D, Adeshakin AO, Xu M, Afolabi LO, Zhang G, Chen YH et al.</italic> Lipid metabolic pathways confer the immunosuppressive function of myeloid-derived suppressor cells in tumor. Front Immunol. 2019;10:1399. DOI: 10.3389/fimmu.2019.01399.</mixed-citation></ref><ref id="ref81"><label>81</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Al-Khami AA, Zheng L, Del Valle L, Hossain F, Wyczechowska D, Zabaleta J et al.</italic> Exogenous lipid uptake induces metabolic and functional reprogramming of tumor-associated myeloid-derived suppressor cells. Oncoimmunology. 2017;6(10):e1344804. DOI: 10.1080/2162402X.2017.1344804.</mixed-citation></ref><ref id="ref82"><label>82</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Al-Khami AA</italic>, <italic>Rodriguez PC</italic>, <italic>Ochoa AC</italic>. Metabolic reprogramming of myeloid-derived suppressor cells (MDSC) in cancer. Oncoimmunology. 2016;5(8):e1200771. DOI: 10.1080/2162402X.2016.1200771.</mixed-citation></ref><ref id="ref83"><label>83</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Hossain F, Al-Khami AA, Wyczechowska D, Hernandez C, Zheng L, Reiss K et al.</italic> Inhibition of fatty acid oxidation modulates immunosuppressive functions of myeloid-derived suppressor cells and enhances cancer therapies. Cancer Immunol Res. 2015;3(11):1236–47. DOI: 10.1158/2326-6066.CIR-15-0036.</mixed-citation></ref><ref id="ref84"><label>84</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Veglia F, Tyurin VA, Blasi M, De Leo A, Kossenkov A, Donthireddy L et al.</italic> Fatty acid transport protein 2 reprograms neutrophils in cancer. Nature. 2019;569(7754):73–8. DOI: 10.1038/s41586-019-1118-2.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>