<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Archiving and Interchange DTD v1.4 20241031//EN" "https://jats.nlm.nih.gov/archiving/1.4/JATS-archive-oasis-article1-4-mathml3.dtd">
<article xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xsi:noNamespaceSchemaLocation="https://jats.nlm.nih.gov/archiving/1.4/xsd/JATS-archive-oasis-article1-4-mathml3.xsd" article-type="review-article" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Клиническая и экспериментальная морфология</journal-title></journal-title-group><issn publication-format="print">2226-5988</issn><issn publication-format="electronic">2686-6749</issn><publisher><publisher-name xml:lang="ru">ООО &quot;Группа МДВ&quot;</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.31088/CEM2025.14.2.16-26</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Обзорная статья</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="ru">Облигатные предраковые изменения внепеченочных желчных протоков: билиарная интраэпителиальная неоплазия, внутрипротоковая папиллярная неоплазия</article-title></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0009-0007-9435-7527</contrib-id><name><surname>Сураев</surname><given-names>Дмитрий Эдуардович</given-names></name><bio><p>врач-патологоанатом централизованного патологоанатомического отделения по профилю «онкология» (ГБУЗ Московская городская онкологическая больница No 62 Департамента здравоохранения города Москвы)</p></bio><email>surik195@ya.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-6373-1888</contrib-id><name><surname>Паклина</surname><given-names>Оксана Владимировна</given-names></name><bio><p>доктор медицинских наук; научный консультант лаборатории инновационной патоморфологии (ГБУЗ Московский клинический научно-практический центр имени А.С. Логинова Департамента здравоохранения города Москвы); главный научный сотрудник лаборатории электронной микроскопии патологоанатомического отдела (ФГБУ Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А.В. Вишневского Минздрава России,)</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff2"></xref><xref ref-type="aff" rid="aff3"></xref></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-6247-9481</contrib-id><name><surname>Калинин</surname><given-names>Дмитрий Валерьевич</given-names></name><bio><p>кандидат медицинских наук; заведующий патологоанатомическим отделением (ФГБУ Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А.В. Вишневского Минздрава России,)</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff3"></xref></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-0649-6452</contrib-id><name><surname>Каннер</surname><given-names>Дмитрий Юрьевич</given-names></name><bio><p>кандидат медицинских наук; главный врач (ГБУЗ Московская городская онкологическая больница No 62 Департамента здравоохранения города Москвы)</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref></contrib></contrib-group><aff id="aff1"><city>Москва</city><country>Россия</country><institution>ГБУЗ Московская городская онкологическая больница No 62 Департамента здравоохранения города Москвы</institution></aff><aff id="aff2"><city>Москва</city><country>Россия</country><institution>ГБУЗ Московский клинический научно-практический центр имени А.С. Логинова Департамента здравоохранения города Москвы</institution></aff><aff id="aff3"><city>Москва</city><country>Россия</country><institution>ФГБУ Национальный медицинский исследовательский центр хирургии имени А.В. Вишневского Минздрава России,</institution></aff><author-notes><fn fn-type="coi-statement"><p>Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.</p></fn></author-notes><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2025-03-31"><day>31</day><month>03</month><year>2025</year></pub-date><volume>14</volume><issue>2</issue><fpage>16</fpage><lpage>26</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2024-07-29"><day>29</day><month>07</month><year>2024</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2024-09-26"><day>26</day><month>09</month><year>2024</year></date></history><permissions><copyright-statement>© Сураев Д. Э., Паклина О. В., Калинин Д. В., Каннер Д. Ю., 2025</copyright-statement><copyright-year>2025</copyright-year><copyright-holder>Сураев Д. Э., Паклина О. В., Калинин Д. В., Каннер Д. Ю.</copyright-holder></permissions><self-uri xlink:href="http://cem-journal.ru/index.php/cem/article/view/306/257" xlink:title="URL">http://cem-journal.ru/index.php/cem/article/view/306/257</self-uri><abstract><p>Стенозы внепеченочных желчных протоков<bold> </bold>– значимая диагностическая проблема в клинической практике. До 40% стенозов внепеченочных желчных протоков приходится на долю билиарной интраэпителиальной неоплазии (Biliary Intraepithelial Neoplasia, BilIN) и внутрипротоковой папиллярной неоплазии (Intraductal Papillary Neoplasia of Bile ducts, IPNB). Риск развития холангиоцеллюлярного рака на фоне BilIN и IPNB вырастает в 160 раз. Показано, что предиктором перехода BilIN и IPNB в холангиоцеллюлярного рака является мутация гена <italic>KRAS</italic>. Ведущую роль в диагностике стенозов играет гистологическое исследование биопсийного материала. Предложены критерии для оценки степени дисплазии в BilIN и IPNB, установлены подтипы IPNB, выявлены наиболее частые мутации в BilIN и IPNB, рекомендованы иммуногистохимические маркеры для определения типа/подтипа стеноза и оценки степени дисплазии эпителия. До сих пор поражения внепеченочных желчных протоков, являющиеся причиной возникновения стенозов или предраковыми процессами, – одна из наиболее актуальных тем в гепатопанкреатобилиарной патологии. На данном этапе необходимо разработать простые алгоритмы гистологической диагностики и внедрить в практику дополнительные методы морфологического исследования.</p></abstract><kwd-group><kwd>стеноз</kwd><kwd>билиарная интраэпителиальная неоплазия</kwd><kwd>внутрипротоковая папиллярная неоплазия</kwd><kwd>дисплазия</kwd><kwd>мутации</kwd><kwd>иммуногистохимическая диагностика</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement>Работа выполнена в рамках государственного бюджетного финансирования.</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body><p><bold>Введение</bold></p><p>Повреждения внепеченочных желчных протоков (ЖП), приводящие к стенозу/обтурации просвета, – значимая диагностическая проблема в клинической практике [1, 2]. В большинстве случаев причиной стенозов внепеченочных ЖП являются опухоли, из них до 40% приходится на долю неоплазий с неопределенным потенциалом злокачественности, включающих в себя билиарную интраэпителиальную неоплазию (Biliary Intraepithelial Neoplasia, BilIN) и внутрипротоковую папиллярную неоплазию (Intraductal Papillary Neoplasm of the Bile Ducts, IPNB) [3]. Несмотря на то, что в последней классификации Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ, 2019) подробно изложены гистологические критерии оценки данных неоплазий, до сих пор остаются пробелы и трудности их применения для исследования биоптатов малых размеров. Проблема диагностики обусловлена относительно низкой частотой встречаемости злокачественных новообразований внепеченочных ЖП в мире (1,02 на 100 000 человек) и трудностью доступа во время выполнения эндоскопических исследований [3]. Дифференциальная диагностика стенозов ЖП крайне важна, так как она определяет дальнейшую тактику ведения пациентов и исход заболевания. Лабораторно-инструментальные исследования позволяют только предположить вероятную причину стеноза, однако почти в 50% случаев окончательная этиология стенозов остается нераспознанной [4].</p><p>Цели данного обзора литературы – освещение морфологических критериев при BilIN и IPNB, а также понимание их биологии.</p><p><italic>Эпидемиология</italic></p><p>По данным классификации ВОЗ 2019 года, 70% случаев IPNB приходится на внутрипеченочные ЖП, а 30% случаев – на внепеченочные. Случаи выявления BilIN чрезвычайно редки и составляют от 0,1% до 5% обнаруженныхопухолевых поражений внепеченочных ЖП [5]. Поражения ЖП, такие как BilIN и IPNB, характерны для эндемичных по халангиоцеллюлярному раку (ХЦР) стран Юго-Восточной Азии [5]. Соотношение женщин и мужчин – 1:1,3. Средний возраст пациентов варьирует от 60 до 69 лет [6–10]. В 70% случаев BilIN и IPNB выступают в качестве облигатных предраковых процессов [11, 12]. Риск развития ХЦР на фоне BilIN и IPNB вырастает в 160 раз [9, 10, 13].</p><p><italic>Этиология</italic></p><p>К ведущим этиологическим факторам возникновения BilIN и IPNB внепеченочных ЖП относят аномалии развития ЖП (26–34% случаев), холедохолитиаз (10–18,5%), паразитарную инвазию <italic>Opistho</italic><italic>rchis</italic> и <italic>Clonorchis</italic> (10%), цирроз печени разной этиологии, вирусные гепатиты В и С (2–6%), употребление алкоголя (3%), табакокурение (2% случаев), хронический аутоиммунный панкреатит [5, 9, 14, 15]. Описанные этиологические факторы запускают сложную многоступенчатую последовательность дисплазия–рак [16–18].</p><p><italic>Молекулярно-генетические нарушения</italic></p><p>В процессе эмбриогенеза дистальная часть внепеченочных ЖП развивается из клеток-предшественников желчных протоков поджелудочной железы под влиянием транскрипционных факторов SOX17 и PDX1 [19]. Нишами стволовых клеток внепеченочных ЖП у взрослого человека являются перибилиарные железы [20, 21]. Есть данные, что одним из источников развития ХЦР могут быть перибилиарные железы, содержащие стволовые клетки [20–22].</p><p>M. Hsu et al. показали, что предиктор перехода BilIN и IPNB в ХЦР – мутация гена <italic>KRAS</italic> как наиболее частая при этом новообразовании (33% случаев) [23]. Наоборот, мутацию онкогена <italic>р53</italic> рассматривают как более позднее событие в развитии ХЦР, так как не выявили его гиперэкспрессию в BilIN и IPNB, что подтверждено в исследовании M. Nagao et al. [23, 24]. Частота встречаемости мутаций в IPNB варьирует в зависимости от типа поражения [6, 7].</p><p>При поиске маркеров ранней диагностики ХЦР на основе изучения микро-РНК нормального эпителия внепеченочных ЖП, BilIN и ХЦР выявлено, что снижение miR-451a характерно для перехода BillIN в ХЦР [25].</p><p>В 2022 году была создана модель канцерогенеза для изучения механизмов возникновения ХЦР через BilIN и IPNВ на основании определяющих транскрипционных факторов и частых мутаций (H. Tomita et al.) [26]. В основе модели канцерогенеза лежали два сигнальных пути онкогенеза: RAS и TGFβ/SMAD. По данным специалистов, аномальная экспрессия фактора роста FGF10 приводит к развитию гиперплазии эпителия панкреатобилиарной зоны [26–28]. Наряду с этим было показано, что сочетание мутаций <italic>KRAS</italic>, <italic>TP53</italic>, <italic>SMAD4</italic> и потеря <italic>CD</italic><italic>KN2</italic><italic>A</italic>/<italic>CDKN2B</italic> (включая <italic>P16INK4A</italic>) у генно-модифицированных мышей ассоциированы с переходом BilIN и IPNB в ХЦР [26].</p><p><italic>Клинико-инструментальная</italic><italic> диагностика</italic></p><p>В настоящее время патогномоничных лабораторных маркеров для диагностики BilIN и IPNB нет [8, 29–34]. Например, сывороточные маркеры СА-19 и СЕА недостаточно чувствительны даже при ранних стадиях развития ХЦР, таким образом их применение с целью диагностики воспалительных, реактивных изменений в эпителии внепеченочных ЖП, а также использование с целью диагностики BilIN и IPNB нецелесообразно [35]. Изменения уровней аланинаминотрансферазы, аспартатаминотрансферазы, щелочной фосфатазы и гамма-глутамилтрансферазы носят неспецифический характер [36]. Отмечено, что использование сывороточного маркера s-p53-Abs в сочетании с СА-19 и СЕА может обладать достаточной чувствительностью при диагностике ранних форм ХЦР [35].</p><p>Ведущими и наиболее распространенными инструментальными методами диагностики BilIN и IPNB являются ультразвуковое исследование (УЗИ) органов брюшной полости, компьютерная томография (КТ) с контрастированием, магнитно-резонансная томография (МРТ) с контрастированием, магнитно-резонансная холангиопанкреатография (МРХПГ), эндоскопическая ретроградная холангиопанкреатография (ЭРХПГ), холангиоскопия и эндоскопическая ультрасонография (ЭУС) [9, 29–34].</p><p>Первичный диагностический поиск начинают с УЗИ. BilIN определяется как локальное сужение просвета ЖП с утолщением его стенки и дилатацией проксимальных ЖП. При УЗИ IPNB характеризуется как узловое образование различной эхогенности с дилатацией проксимальных ЖП. Аналогичная картина УЗИ наблюдается и при ХЦР, что не позволяет провести дифференциальную диагностику между BilIN, IPNB и ХЦР.</p><p>До развития стеноза BilIN не имеет специфических КТ и МРТ признаков [3, 29, 37–39]. IPNB – более частая находка во время проведения МРТ и МРХПГ по сравнению с BilIN. Особенности МРТ визуализации IPNB основаны на соотношении тканевого/папиллярного и муцинозного компонентов поражения. В настоящее время определены четыре рентгенологических типа роста IPNB (табл. 1) [37–39].</p><p>При проведении ЭРХПГ и МРХПГ для BilIN и IPNB характерно неспецифическое сужение внепеченочных ЖП c видимым внутрипросветным дефектом наполнения контрастного вещества и дилатацией ЖП выше уровня поражения [11, 29, 38].</p><p>При холангиоскопии BilIN определяется как плоскоприподнятое образование с измененным сосудистым рисунком [11]. Во время холангиоскопии при обнаружении IPNB в ЖП визуализируются массивные папиллярные разрастания и скопления прозрачных слизистых масс в просвете [40].</p><p>ЭУС позволяет с высокой точностью выявлять стенозы внепеченочных ЖП. По данным литературы, чувствительность метода составляет 87–90%, а специфичность 88–98%. Для стенозов внепеченочных ЖП выделены критерии ЭУС, позволяющие предположить их доброкачественный или злокачественных характер (табл. 2) [4, 29, 30–33].</p><p><italic>Гистологическая диагностика</italic></p><p>Первые подходы к классификации BilIN были изложены в середине 1980-х годов. Согласно первой классификации, выделены гиперплазия эпителия ЖП, дисплазия эпителия ЖП, карцинома <italic>in situ</italic> ЖП. С 2005 по 2019 год использовалась трехбалльная система оценки степени дисплазии в BilIN: BilIN-1, BilIN-2, BilIN-3 (табл. 3) [5, 41].</p><p>С 2019 года и по настоящее время используется двухуровневая система градации BilIN (табл. 3) [5, 41, 42].</p><p>В 2019 году ВОЗ охарактеризовала IPNB как полиповидные образования внепеченочных ЖП (ВПЖП), которые полностью или частично обтурируют просвет ВПЖП. Также ВОЗ было предложено выделять два типа IPNB. В основу классификации легли гистологические особенности IPNB, наличие/отсутствие секреции муцина, локализация, степень агрессивности, склонность к инвазивному росту и переходу в ХЦР и сродство IPNB c внутрипротоковой муцинозной неоплазией поджелудочной железы (Intraductal Papillary Mucinous Neoplasm, IPMN) (табл. 4).</p><p>Отмечено, что IPNB можно рассматривать как аналог IPMN, но с локализацией во внепеченочных ЖП. IPNB типа 1 и IPMN имеют схожие черты. Например, кишечный подтип IPNB характеризуется частыми мутациями <italic>KRAS</italic>, <italic>GNAS</italic> и <italic>RNF43</italic>, которые распространены в IPMN [18]. Стоит отметить, что IPNB кишечного типа вырабатывают внеклеточный муцин только в 1/3 случаев в отличие от IPMN, которые продуцируют обильное количество муцина в большинстве случаев [39]. До сих пор сходства или различия в генетических мутациях между IPNB и IPMN не были полностью исследованы. Показано, что мутации <italic>APC</italic> или <italic>CTNNB1</italic> характерны для панкреатобилиарного подтипа IPNB, но эти мутации редки для IPMN. Следовательно, панкреатобилиарный подтип IPNB не может выступать в качестве аналога IPMN во внепеченочных ЖП [40]. Также отмечено, что все типы IPNB в сравнении с IPMN обладают бóльшим злокачественным потенциалом и чаще ассоциированы с инвазивным ростом злокачественной опухоли [39].</p><p>Гистологическое строение IPNB неоднородно. В настоящее время принято деление IPNB на четыре подтипа в зависимости от типа эпителиальных клеток, наличия секреции внутриклеточного и внеклеточного муцина и особенностей стромы (табл. 5) [6, 8, 29, 39, 40, 43–46].</p><p>Как и в BilIN, для всех подтипов IPNB принята двухуровневая система градации: IPNB low-grade (дисплазия эпителия низкой степени) и IPNB high-grade (дисплазия эпителия высокой степени) (табл. 6).</p><p>При определении молекулярно-биологического статуса облигатных предопухолевых состояний ЖП отмечено, что для BilIN и всех подтипов IPNB характерны цитоплазматическая экспрессия MUC5AC и отсутствие экспрессии SMADA4. В зависимости от степени дисплазии эпителия отмечаются нарастание уровней экспрессии циклина D1, p53, p21, Ki-67 и снижение уровня экспрессии E-кадгерина и β-катенина. Экспрессия СDX2, цитокератина 7, цитокератина 20, MUC-1, MUC-2 и р16 варьирует в зависимости от типа неоплазии (табл. 7) [11, 39, 43–45].</p><p>Мутационный профиль BilIN и IPNB различных подтипов характеризуется наиболее частыми мутациями <italic>KRAS</italic> и <italic>ТР53</italic>. Однако среди разных подтипов IPNB мутационных профиль имеет ряд особенностей (табл. 8).</p><p><italic>Цитологическая диагностика</italic></p><p>Браш-цитология внепеченочных ЖП широко используется в повседневной клинической практике при диагностике билиарных стенозов, так как она может одновременно выполняться с ЭРХП или ЭУС. При цитологическом исследовании определяются клетки цилиндрической/кубической формы, которые группируются в папиллярные структуры. Ядра эпителиальных клеток овальной формы с грубодисперсным хроматином. В зависимости от подтипа IPNB могут обнаруживаться эпителиальные клетки с округлыми ядрами и обильной мелкозернистой эозинофильной цитоплазмой. Выявление групп атипичных клеток с нарушенной ядерной мембраной, анизонуклеозом, повышенным ядерно-цитоплазматическим соотношением характерно для BilIN high-grade и IPNB high-grade [46]. Чувствительность метода составляет от 20 до 70% [47]. Уровень чувствительности браш-цитологии напрямую зависит от размеров опухоли и протяженности стеноза ЖП [47, 48]. Выявлена связь между чувствительностью браш-цитологии и возрастом пациентов, высоким уровнем билирубина и наличием опухолевой массы при визуализации поперечного сечения. Отмечено, что чувствительность браш-цитологии возрастает при ХЦР, что объясняется выраженной обструкцией ЖП и инвазивным ростом ХЦР [49]. Тем не менее нужно учитывать тот факт, что реактивные изменения эпителия ЖП в результате предшествующего инвазивного вмешательства затрудняют дифференциальную диагностику билиарных новообразований.</p><p><italic>Дифференциальная диагностика</italic></p><p>BilIN требует дифференциальной диагностики с реактивной атипией эпителия желчных протоков. В отличие от BilIN для реактивной атипии характерен резкий переход от нормального эпителия к эпителию с реактивными изменениями. В окружающих тканях отмечаются изъязвления и воспалительная инфильтрация [5, 12].</p><p>Следует отметить, что в перибилиарных железах также могут наблюдаться поражения, похожие на BilIN. Морфологически они характеризуются псевдопапиллярными и микропапиллярными изменениями в выстилающем эпителии в сочетании с кистозной трансформацией желез. До настоящего времени неясно, можно ли такое поражение называть BilIN перибилиарных желез и могут ли эти изменения являться источником IPNB с поражением перибилиарных желез [5, 12, 50].</p><p>Воспалительные полипы ЖП, как правило, являются одним из осложнений желчнокаменной болезни, реже послеоперационными осложнениями. Поверхность полипов выстлана изъязвленным эпителием. Иногда отмечаются микропапиллярные разрастания и гиперплазия желез собственной пластинки слизистой оболочки. В выстилающем эпителии обнаруживаются внутриэпителиальные нейтрофилы. Строма представлена грануляционной тканью разной степени зрелости [51].</p><p>Cклерозирующий холангит на 10–15% увеличивает риск развития ХЦР. Заболевание характеризуется мультифокальным утолщением стенок ЖП, лимфоцитарной инфильтрацией разной степени выраженности и концентрическим фиброзом стенки ЖП [52–53].</p><p>В 2021 году были опубликованы результаты консенсуса между патологоанатомами, на котором определены и утверждены критерии для дифференциальной диагностики причин стенозов внепеченочных ЖП (табл. 9) [3].</p><p><italic>Лечение</italic></p><p>В настоящее время для подавляющего большинства билиарных стенозов (BilIN, IPNB) ведущим методом лечения является хирургическое [54, 55]. При резекции измененных внепеченочных ЖП прерывается патогенетическая связь дисплазия–рак [55–60]. Показано, что при раннем выявлении BilIN и IPNB с последующей хирургической резекцией внепеченочных ЖП снижается вероятность развития ХЦР в долгосрочной перспективе [57, 58, 60]. При выявлении ограниченных стенозов с дисплазией эпителия low-grade и низкой мутационной нагрузкой допустимо динамическое наблюдение пациентов с выполнением баллонной дилатации стеноза и консервативной терапией явлений обструктивной желтухи [9, 40].</p><p><bold>Заключение</bold></p><p>Неопластические поражения внепеченочных желчных протоков, являющиеся причиной стеноза или предраковым процессом, являются одной из наиболее актуальных тем в гепатопанкреатобилиарной патологии. К сожалению, диагностика неинвазивных поражений желчных протоков остается на недостаточном уровне. В предшествующие десятилетия это объяснялось низкой специфичностью лучевой диагностики и трудностью получения клеточного/тканевого материала из новообразования. В настоящее время с развитием эндоскопической ультрасонографии акценты диагностики сместились в сторону морфологической интерпретации полученного биоптата. Дефицит высококвалифицированных кадров среди цитологов и патологоанатомов, специализирующихся в данной области, отсутствие четких гистологических критериев диагностики и целостности в понимании неопластических процессов в желчных протоках являются препятствиями для повышения качества медицинской помощи пациентам, поэтому на данном этапе необходимо разработать простые алгоритмы гистологической диагностики и внедрить в практику дополнительные методы морфологического исследования.</p></body><back><ref-list><ref id="ref1"><label>1</label><mixed-citation><italic>Громова Е.В., Фрейнд Г.Г. </italic>Значение морфологических исследований в диагностике билиарной интраэпителиальной неоплазии при непаразитарных кистах печени. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2023;6:153–156. DOI: 10.31146/1682-8658-ecg-214-6-153-156.</mixed-citation></ref><ref id="ref2"><label>2</label><mixed-citation><italic>Бредер В.В.</italic><italic>, Базин И.С., Балахнин П.В., Виршке Э.Р., Косырев В.Ю., Ледин Е.В. и др. </italic>Практические рекомендации по лекарственному лечению больных злокачественными опухолями печени и желчевыводящей системы. Злокачественные опухоли. 2022;12(3s2-1):467–529. DOI: 10.18027/2224-5057-2022-12-3s2-467-529.</mixed-citation></ref><ref id="ref3"><label>3</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Liu</italic><italic> </italic><italic>YJ</italic><italic>, </italic><italic>Rogers</italic><italic> </italic><italic>J</italic><italic>,</italic><italic> Liu</italic><italic> </italic><italic>YZ</italic><italic>, </italic><italic>Gui</italic><italic> </italic><italic>X</italic><italic>, </italic><italic>Jalikis</italic><italic> </italic><italic>F</italic><italic>, </italic><italic>Koch</italic><italic> </italic><italic>L</italic><italic> </italic><italic>et</italic><italic> </italic><italic>al</italic><italic>.</italic> Interobserver agreement in pathologic evaluation of bile duct biopsies. Hum Pathol. 2021;107:29–38. DOI: 10.1016/j.humpath.2020.10.003.</mixed-citation></ref><ref id="ref4"><label>4</label><mixed-citation><italic>Солодинина Е.Н., Старков Ю.Г., Шумкин Л.В. </italic>Эндосонография в дифференциальной диагностике стенозов общего желчного протока. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2015;116(4):22–26. Доступно по адресу: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=23662625 (получено 25.07.2024).</mixed-citation></ref><ref id="ref5"><label>5</label><mixed-citation xml:lang="en">The WHO Classification of Tumours Editorial Board (eds.). WHO classification of tumours. Digestive system tumours. V. 1. 5th ed. Lyon: IARC, 2019. 635 p.</mixed-citation></ref><ref id="ref6"><label>6</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Goeppert B, Stichel D, Toth R, Fritzsche S, Loeffler MA, Schlitter AM</italic> <italic>et al.</italic> Integrative analysis reveals early and distinct genetic and epigenetic changes in intraductal papillary and tubulopapillary cholangiocarcinogenesis. Gut. 2022;71(2):391–401. DOI: 10.1136/gutjnl-2020-322983.</mixed-citation></ref><ref id="ref7"><label>7</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Wang T, Askan G, Ozcan K,</italic><italic> Rana S, Zehir A, Bhanot UK</italic><italic> et al</italic><italic>. </italic>Tumoral intraductal neoplasms of the bile ducts comprise morphologically and genetically distinct entities. Arch Pathol Lab Med. 2023;147(12):1390–401. DOI:10.5858/arpa.2022-0343-OA.</mixed-citation></ref><ref id="ref8"><label>8</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>You Y, Choi S</italic><italic>H, Choi DW, Heo JS, Han IW, Jang KT et al</italic><italic>.</italic><italic> </italic>Recurrence after resection for intraductal papillary neoplasm of bile duct (IPNB) according to tumor location. J Gastrointest Surg. 2020;24(4):804–12. DOI: 10.1007/s11605-019-04235-8.</mixed-citation></ref><ref id="ref9"><label>9</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Llu</italic><italic>í</italic><italic>s</italic><italic> </italic><italic>N</italic><italic>, </italic><italic>Serradilla</italic><italic>-</italic><italic>Mart</italic><italic>í</italic><italic>n</italic><italic> </italic><italic>M</italic><italic>, </italic><italic>Achalandabaso</italic><italic> </italic><italic>M</italic><italic>, </italic><italic>Jehaes</italic><italic> </italic><italic>F</italic><italic>, </italic><italic>Dasari</italic><italic> </italic><italic>BVM</italic><italic>, </italic><italic>Mambrilla</italic><italic>-</italic><italic>Herrero</italic><italic> </italic><italic>S</italic><italic> </italic><italic>et</italic><italic> </italic><italic>al</italic><italic>.</italic> Intraductal papillary neoplasms of the bile a European retrospective multicenter observational study (EUR-IPNB study). Int J Surg. 2023;109(4):760–71. DOI: 10.1097/JS9.0000000000000280.</mixed-citation></ref><ref id="ref10"><label>10</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Paik KY, Heo JS, Choi SH, Choi DW.</italic> Intraductal papillary neoplasm of the bile ducts: the clinical features and surgical outcome of 25 cases. J Surg Oncol. 2008;97(6):508–12. DOI: 10.1002/jso.20994.</mixed-citation></ref><ref id="ref11"><label>11</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Yoshida</italic><italic> </italic><italic>N</italic><italic>, </italic><italic>Aoyagi</italic><italic> </italic><italic>T</italic><italic>, </italic><italic>Kimura</italic><italic> </italic><italic>Y</italic><italic>, </italic><italic>Naito</italic><italic> </italic><italic>Y</italic><italic>, </italic><italic>Izuwa</italic><italic> </italic><italic>A</italic><italic>, </italic><italic>Mizoguchi</italic><italic> </italic><italic>K</italic><italic> </italic><italic>et</italic><italic> </italic><italic>al</italic><italic>.</italic> A rare case of symptomatic grossly-visible biliary intraepithelial neoplasia mimicking cholangiocarcinoma. World J Surg Oncol. 2019;17(1):191. DOI: 10.1186/s12957-019-1737-y.</mixed-citation></ref><ref id="ref12"><label>12</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Sato Y, Sasaki M, Harada K, Aishima S, Fukusato T, O</italic><italic>jima H</italic><italic> et al.</italic> Pathological diagnosis of flat epithelial lesions of the biliary tract with emphasis on biliary intraepithelial neoplasia. J Gastroenterol. 2014;49(1):64–72. DOI: 10.1007/s00535-013-0810-5.</mixed-citation></ref><ref id="ref13"><label>13</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Aishima S, Kubo Y, Tanaka Y, Oda Y.</italic><italic> </italic><italic>Share.</italic> Histological features of precancerous and early cancerous lesions of biliary tract carcinoma. J Hepatobiliary Pancreat Sci. 2014;21(7):448–52. DOI: 10.1002/jhbp.71.</mixed-citation></ref><ref id="ref14"><label>14</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Xu Z, Fan X, Zhang C, Li Y, Jiang D, H</italic><italic>u F </italic><italic>et al.</italic> Residual biliary intraepithelial neoplasia without malignant transformation at resection margin for perihilar cholangiocarcinoma does not require expanded resection: a dual center retrospective study. World J Surg Oncol. 2024;22(1):161. DOI: 10.1186/s12957-024-03395-5.</mixed-citation></ref><ref id="ref15"><label>15</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Clements O, Eliahoo J, Kim JU, Taylor-Robinson SD, Khan SA</italic><italic>.</italic> Risk factors for intrahepatic and extrahepatic cholangiocarcinoma: a systematic review and meta-analysis. J Hepatol. 2020:72(1):95–103. DOI: 10.1016/j.jhep.2019.09.007.</mixed-citation></ref><ref id="ref16"><label>16</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Aigner B, Kornprat P, Schöllnast H, Kasparek AK, Mischinger HJ, Haybaeck J</italic><italic>.</italic> A case of focal small-cell neuroendocrine carcinoma in the vicinity of the extrahepatic bile duct, adjacent to an extensive biliary intraepithelial neoplasm: a diagnostic challenge with major clinical implications. Anticancer Res. 2015;35(9):4821–8. PMID: 26254373.</mixed-citation></ref><ref id="ref17"><label>17</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Kaino M, Kaino</italic><italic> S, Goma W, Hideura E, Hitosugi T, Harima Y et al.</italic> A case of mixed neuroendocrine non-neuroendocrine neoplasm of the distal bile duct with biliary intraepithelial neoplasia. Clin J Gastroenterol. 2021;14(1):297–303. DOI: 10.1007/s12328-020-01174-9.</mixed-citation></ref><ref id="ref18"><label>18</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Jain D, Nayak NC</italic><italic>.</italic> Bile duct changes in different etiologic types of end-stage chronic liver disease: a study on native explant livers. J Clin Pathol. 2012;65(4):348–51. DOI: 10.1136/jclinpath-2011-200472.</mixed-citation></ref><ref id="ref19"><label>19</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Spence JR, Lange AW, Lin SC, </italic><italic>Kaestner KH, Lowy AM, Kim I</italic><italic> et al</italic><italic>.</italic> Sox17 regulates organ lineage segregation of ventral foregut progenitor cells. Dev Cell. 2009;17(1):62–74. DOI: 10.1016/j.devcel.2009.05.012.</mixed-citation></ref><ref id="ref20"><label>20</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> AD Burt, LD Ferrell, SG Hubscher.</italic> MacSween’s Pathology of the Liver. 7th ed. Philadelphia: Elsevier, 2017. 1043 p.</mixed-citation></ref><ref id="ref21"><label>21</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Uemura M, Ozawa A, Nagata T, Ku</italic><italic>rasawa K, Tsunekawa N, No</italic><italic>buhisa I et al.</italic> Sox17 haploinsufficiency results in perinatal biliary atresia and hepatitis in C57BL/6 background mice. Development. 2013;140(3):639–48. DOI: 10.1242/dev.086702.</mixed-citation></ref><ref id="ref22"><label>22</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Oikawa T.</italic> Cancer stem cells and their cellular origins in primary liver and biliary tract cancers. Hepatology. 2016;64(2):645–51. DOI: 10.1002/hep.28485.</mixed-citation></ref><ref id="ref23"><label>23</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Hsu M, Sasaki M, Igarashi S, Sat</italic><italic>o Y, Nakanuma Y</italic><italic>.</italic> KRAS and GNAS Mutations and p53 overexpression in biliary intraepithelial neoplasia and intrahepatic cholangiocarcinomas. Cancer. 2013;119(9):1669–74. DOI: 10.1002/cncr.27955.</mixed-citation></ref><ref id="ref24"><label>24</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Nagao</italic><italic> </italic><italic>M</italic><italic>, </italic><italic>Mizukoshi</italic><italic> </italic><italic>K</italic><italic>, </italic><italic>Nakayama</italic><italic> </italic><italic>S</italic><italic>, </italic><italic>Namikawa</italic><italic> </italic><italic>M</italic><italic>, </italic><italic>Hiramatsu</italic><italic> </italic><italic>Y</italic><italic>, </italic><italic>Maruno</italic><italic> </italic><italic>T</italic><italic> </italic><italic>et</italic><italic> </italic><italic>al</italic><italic>.</italic> p53 protects against formation of extrahepatic biliary precancerous lesions in the context of oncogenic Kras. Oncotarget. 2023;14:276–9. DOI: 10.18632/oncotarget.28380.</mixed-citation></ref><ref id="ref25"><label>25</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Loeffler MA, Hu J, Kirchner </italic><italic>M, Wei X, Xiao Y, Albrecht T</italic><italic> et al.</italic> miRNA profiling of biliary intraepithelial neoplasia reveals stepwise tumorigenesis in distal cholangiocarcinoma via the miR-451a/ATF2 axis. J Pathol. 2020;252(3):239–51. DOI: 10.1002/path.5514.</mixed-citation></ref><ref id="ref26"><label>26</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Tomita H, Hara A</italic><italic>.</italic> Development of extrahepatic bile ducts and mechanisms of tumorigenesis: lessons from mouse models. Pathol Int. 2022;72(12):589–605. DOI: 10.1111/pin.13287.</mixed-citation></ref><ref id="ref27"><label>27</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Norgaard</italic><italic> GA, Jensen JN, Jensen J</italic><italic>.</italic> FGF10 signaling maintains the pancreatic progenitor cell state revealing a novel role of Notch in organ development. Dev Biol. 2003;264(2):323–38. DOI: 10.1016/j.ydbio.2003.08.013.</mixed-citation></ref><ref id="ref28"><label>28</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Memarzadeh S, Xin L, Mulholland DJ, Mansukhani A, Wu H, Teitell MA et al.</italic> Enhanced paracrine FGF10 expression promotes formation of multifocal prostate adenocarcinoma and an increase in epithelial androgen receptor. Cancer Cell. 2007;12(6):572–85. DOI: 10.1016/j.ccr.2007.11.002.</mixed-citation></ref><ref id="ref29"><label>29</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Wang W, Chen W, Li K, Wang J.</italic> Successful treatment of biliary intraepithelial neoplasia in the common bile duct via local excision: a case report. Oncol Lett. 2016;11(5):3142–4. DOI: 10.3892/ol.2016.4336.</mixed-citation></ref><ref id="ref30"><label>30</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Shuhaib A, Farah H, Sayana H.</italic> A case of biliary cast syndrome after liver transplantation.<italic> </italic>Am J<italic> </italic>Gastroenterol. 2022;117(10S):e1301–2. DOI: 10.14309/01.ajg.0000864120.61632.62.</mixed-citation></ref><ref id="ref31"><label>31</label><mixed-citation xml:lang="en"><bold> </bold><italic>Tsuyuguchi T, Sakai Y, Sugiyama H, Miyakawa K, Ishihara T, Ohtsuka M </italic><italic>et al.</italic> Endoscopic diagnosis of intraductal papillary mucinous neoplasm of the bile duct. J Hepatobiliary Pancreat Sci. 2010;17(3):230–5. DOI 10.1007/s00534-009-0153-z.</mixed-citation></ref><ref id="ref32"><label>32</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Yoon M.</italic> Intrahepatic and extrahepatic intraductal papillary neoplasms of bile duct. Korean J Hepatobiliary Pancreat Surg. 2013;17(1):48–52. DOI: 10.14701/kjhbps.2013.17.1.48.</mixed-citation></ref><ref id="ref33"><label>33</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Nana</italic><italic>shima A,</italic><italic> </italic><italic>Imamura N, Hiyoshi M, Hamada T, Yano K, Wada T</italic> <italic>et al.</italic> Planned limited resection of the extrahepatic bile duct in a case of intraductal papillary neoplasm of the bile duct based on preoperative examinations. Clin J Gastroenterol. 2019;13(2):233–9. DOI: 10.1007/s12328-019-01049-8.</mixed-citation></ref><ref id="ref34"><label>34</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Miyabe K, Notohara K, Asano G, Kato A, Jinno N, Natsume M</italic><italic> et al.</italic> Early detection of high-grade biliary intraepithelial neoplasia (BilIN-3) in the cystic duct visualized by SpyGlass DS cholangioscopy. Intern Med. 2021;60(1):47–52. DOI: 10.2169/internalmedicine.5072-20.</mixed-citation></ref><ref id="ref35"><label>35</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Okada R</italic><italic>, Shimada H, Otsuka Y, Tsuchiya M, Ishii J, Katagiri T.</italic> Serum p53 antibody as a potentional tumor marker in extrahepatic cholangiocarcinoma. Surg Today. 2017;47(12):1492–9. DOI: 10.1007/s00595-017-1540-8.</mixed-citation></ref><ref id="ref36"><label>36</label><mixed-citation><italic>Быстровская Е.В., Ильченко А.А.</italic> Патогенетические и диагностические аспекты постхолецистэктомического синдрома. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2009;3:69–80. Доступно по адресу: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=15216435 (получено 25.07.2024).</mixed-citation></ref><ref id="ref37"><label>37</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Zulfiqar M, Chatterjee D, Yoneda N, Hoegger MJ, Ronot M, Hecht EM</italic><italic> et al</italic><italic>.</italic> Imaging features of premalignant biliary lesions and predisposing conditions with pathologic correlation. Radiographics. 2022;42(5):1320–37. DOI: 10.1148/rg.210194.</mixed-citation></ref><ref id="ref38"><label>38</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Ray S, Dhali A, Saha H, Ghosh R, Khamrui S, Dhali GK</italic><italic>.</italic> Intraductal papillary neoplasm of the bile duct: a case report of a rare tumor with a brief review of literature. Int J Surg Case Rep. 2024;115:109243. DOI: 10.1016/j.ijscr.2024.109243.</mixed-citation></ref><ref id="ref39"><label>39</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Aslam A, Wasnik AP, Shi J, Sahai V, Mendiratta-Lala M</italic><italic>.</italic> Intraductal papillary neoplasm of the bile duct (IPNB): CT and MRI appearance with radiology-pathology correlation. Clin Imaging. 2020;66:10–17. DOI: 10.1016/j.clinimag.2020.04.036.</mixed-citation></ref><ref id="ref40"><label>40</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Nakanuma</italic><italic> </italic><italic>Y</italic><italic>, </italic><italic>Uesaka</italic><italic> </italic><italic>K</italic><italic>, </italic><italic>Kakuda</italic><italic> </italic><italic>Y</italic><italic>, </italic><italic>Sugino</italic><italic> </italic><italic>T</italic><italic>, </italic><italic>Kubota</italic><italic> </italic><italic>K</italic><italic>, </italic><italic>Furukawa</italic><italic> </italic><italic>T</italic><italic> </italic><italic>et</italic><italic> </italic><italic>al</italic><italic>.</italic> Intraductal papillary neoplasm of bile duct: updated clinicopathological characteristics and molecular and genetic alterations. J Clin Med. 2020;9(12):3991. DOI: 10.3390/jcm9123991.</mixed-citation></ref><ref id="ref41"><label>41</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Zen Y, Aishima S, Ajioka Y, Haratake J, Kage M, Kondo F</italic><italic> et al.</italic> Proposal of histological criteria for intraepithelial atypical/proliferative biliary epithelial lesions of the bile duct in hepatolithiasis with respect to cholangiocarcinoma: preliminary report based on interobserver agreement. Pathol Int. 2005;55(4):180–8. DOI: 10.1111/j.1440-1827.2005.01816.x.</mixed-citation></ref><ref id="ref42"><label>42</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>O</italic><italic>htani</italic><italic> </italic><italic>H</italic><italic>, </italic><italic>Ishida</italic><italic> </italic><italic>H</italic><italic>, </italic><italic>Ito</italic><italic> </italic><italic>Y</italic><italic>, </italic><italic>Yamaguchi</italic><italic> </italic><italic>T</italic><italic>, </italic><italic>Koizumi</italic><italic> </italic><italic>M</italic><italic>.</italic> Autoimmune pancreatitis and biliary intraepithelial neoplasia of the common bile duct: a case with diagnostically challenging but pathogenetically significant association. Pathol Int. 2011;61(8):481–5. DOI: 10.1111/j.1440-1827.2011.02684.x.</mixed-citation></ref><ref id="ref43"><label>43</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Kim</italic><italic> </italic><italic>HJ</italic><italic>,</italic><italic> Kim</italic><italic> </italic><italic>JS</italic><italic>,</italic><italic> Kim</italic><italic> </italic><italic>BH</italic><italic>, </italic><italic>Bak</italic><italic> </italic><italic>YT</italic><italic>. </italic>Clinicopathologic study of biliary intraepithelial neoplasia in cholangiocarcinoma. Dig Surg. 2017;35(2):116–20. DOI: 10.1159/000475848.</mixed-citation></ref><ref id="ref44"><label>44</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Klöppel G, Adsay V, Konukiewitz B, Kleeff J, Schlitter AM, Esposito I</italic><italic>.</italic> Precancerous lesions of the biliary tree. Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2013;27:(2):285–97. DOI: 10.1016/j.bpg.2013.04.002.</mixed-citation></ref><ref id="ref45"><label>45</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Bowlus CL, Olson KA, Gershwin ME.</italic> Evaluation of indeterminate biliary strictures. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2016;13(1):28–37. DOI: 10.1038/nrgastro.2015.182.</mixed-citation></ref><ref id="ref46"><label>46</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>C</italic><italic>anepa M, Yao </italic><italic>R, Nam GH, Patel NR, Pisharodi L</italic><italic>.</italic> Cytomorphology of intraductal papillary neoplasm of the biliary tract. Diagn Cytopathol. 2019;47(9):922–6. DOI: 10.1002/dc.24212.</mixed-citation></ref><ref id="ref47"><label>47</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Kobayashi M, Ryozawa S, Araki R, Nagata K, Tanisaka Y, Fujita A</italic><italic> et al.</italic> Investigation of factors affecting the sensitivity of bile duct brush cytology. Intern Med. 2019;58(3):329–35. DOI: 10.2169/internalmedicine.1551-18.</mixed-citation></ref><ref id="ref48"><label>48</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Mahmoudi N, Enns R, Amar J, AlAli J, Lam E, Telford J</italic><italic>.</italic> Biliary brush cytology: factors associated with positive yields on biliary brush cytology. World J Gastroenterol. 2008;14(4):569–73. DOI: 10.3748/wjg.14.569.</mixed-citation></ref><ref id="ref49"><label>49</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Parsi MA, Deepinder F, Lopez R, Stevens T, Dodig M, Zuccaro G.</italic> Factors affecting the yield of brush cytology for the diagnosis of pancreatic and biliary cancers. Pancreas. 2011;40(1):52–4. DOI: 10.1097/MPA.0b013e3181f3aa96.</mixed-citation></ref><ref id="ref50"><label>50</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Fukuda A, Kawaguchi Y, Furuyama K, Kodama S, Horiguchi M, Kuhara T et al. </italic>Ectopic pancreas formation in Hes1–knockout mice reveals plasticity of endodermal progenitors of the gut, bile duct, and pancreas. J Clin Invest. 2006;116(6):1484–93. DOI: 10.1172/JCI27704.</mixed-citation></ref><ref id="ref51"><label>51</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Nakaoka</italic><italic> </italic><italic>K</italic><italic>, </italic><italic>Hashimoto</italic><italic> </italic><italic>S</italic><italic>, </italic><italic>Kawabe</italic><italic> </italic><italic>N</italic><italic>, </italic><italic>Kuzuya</italic><italic> </italic><italic>T</italic><italic>, </italic><italic>Tanaka</italic><italic> </italic><italic>H</italic><italic>, </italic><italic>Nakano</italic><italic> </italic><italic>T</italic><italic> </italic><italic>et</italic><italic> </italic><italic>al</italic><italic>.</italic> A rare case of inflammatory polyp in the common bile duct with cholangitis. DEN Open. 2023;3(1):e143. DOI: 10.1002/deo2.143.</mixed-citation></ref><ref id="ref52"><label>52</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Seo</italic><italic> </italic><italic>N</italic><italic>, </italic><italic>Kim</italic><italic> </italic><italic>SY</italic><italic>, </italic><italic>Lee</italic><italic> </italic><italic>SS</italic><italic>, </italic><italic>Byun</italic><italic> </italic><italic>JH</italic><italic>, </italic><italic>Kim</italic><italic> </italic><italic>JH</italic><italic>, </italic><italic>Kim</italic><italic> </italic><italic>HJ</italic><italic> </italic><italic>et</italic><italic> </italic><italic>al</italic><italic>.</italic> Sclerosing cholangitis: clinicopathologic features, imaging spectrum, and systemic approach to differential diagnosis. Korean J Radiol. 2016;17(1):25–38. DOI: 10.3348/kjr.2016.17.1.25.</mixed-citation></ref><ref id="ref53"><label>53</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Claessen MM, Vleggaar FP, Tytgat KM, Siersema PD, van Buuren HR.</italic> High lifetime risk of cancer in primary sclerosing cholangitis. J Hepatol. 2009;50(1):158–64. DOI: 10.1016/j.jhep.2008.08.013.</mixed-citation></ref><ref id="ref54"><label>54</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Pavlidis ET, Galanis IN, Pavlidis TE</italic><italic>.</italic> Current considerations on intraductal papillary neoplasms of the bile duct and pancreatic duct. World J Gastroenterol. 2024;30(10):1461–5. DOI: 10.3748/wjg.v30.i10.1461.</mixed-citation></ref><ref id="ref55"><label>55</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Mart</italic><italic>í </italic><italic>Fern</italic><italic>á</italic><italic>ndez</italic><italic> </italic><italic>R</italic><italic>, </italic><italic>Garc</italic><italic>é</italic><italic>s</italic><italic> </italic><italic>Albir</italic><italic> </italic><italic>M</italic><italic>, </italic><italic>Ballester</italic><italic> </italic><italic>MP</italic><italic>, </italic><italic>Dorcaratto</italic><italic> </italic><italic>D</italic><italic>, </italic><italic>Villagrasa</italic><italic> </italic><italic>R</italic><italic>, </italic><italic>Mu</italic><italic>ñ</italic><italic>oz</italic><italic>-</italic><italic>Forner</italic><italic> </italic><italic>E</italic><italic> </italic><italic>et</italic><italic> </italic><italic>al</italic><italic>.</italic> Surgical treatment of an intraductal papillary mucinous neoplasm of the biliary tract diagnosed by SpyGlass®. Rev Esp Enferm Dig. 2021:113(1):45–7. DOI: 10.17235/reed.2020.7122/2020.</mixed-citation></ref><ref id="ref56"><label>56</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Chen WJ, Wolff E, Varma CR, Shoela R.</italic> Biliary intraepithelial neoplasia with gallbladder adenoma and cirrhosis: a case report. Cureus. 2022;14(8):e27780. DOI: 10.7759/cureus.27780.</mixed-citation></ref><ref id="ref57"><label>57</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> </italic><italic>Mocchegiani</italic><italic> </italic><italic>F</italic><italic>, </italic><italic>Vincenzi</italic><italic> </italic><italic>P</italic><italic>, </italic><italic>Conte</italic><italic> </italic><italic>G</italic><italic>, </italic><italic>Nicolini</italic><italic> </italic><italic>D</italic><italic>, </italic><italic>Rossi</italic><italic> </italic><italic>R</italic><italic>, </italic><italic>Cacciaguerra</italic><italic> </italic><italic>AB</italic><italic> </italic><italic>et</italic><italic> </italic><italic>al</italic><italic>.</italic> Intraductal papillary neoplasm of the bile duct: the new frontier of biliary pathology. World J Gastroenterol. 2023;29(38):5361–73. DOI: 10.3748/wjg.v29.i38.5361.</mixed-citation></ref><ref id="ref58"><label>58</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Cillo U, Fondevila C, Donadon M, Gringeri E, Mocchegiani F, Schlitt HJ et al</italic><italic>.</italic> Surgery for cholangiocarcinoma. Liver Int. 2019;39 Suppl 1:(Suppl Suppl 1):143–55. DOI: 10.1111/liv.14089.</mixed-citation></ref><ref id="ref59"><label>59</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic> Bolondi G, Mocchegiani F, Montalti R, Nicolini D, Vivarelli M, De Pietri L.</italic> Predictive factors of short term outcome after liver transplantation: a review. World J Gastroenterol. 2016;22(26):5936–49. DOI: 10.3748/wjg.v22.i26.5936.</mixed-citation></ref><ref id="ref60"><label>60</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Zarei</italic><italic> </italic><italic>M</italic><italic>, </italic><italic>Shasaeefar</italic><italic> </italic><italic>A</italic><italic>, </italic><italic>Kazemi</italic><italic> </italic><italic>K</italic><italic>, </italic><italic>Dehghani</italic><italic> </italic><italic>M</italic><italic>, </italic><italic>Malekhosseini</italic><italic> </italic><italic>SA</italic><italic>, </italic><italic>Geramizadeh</italic><italic> </italic><italic>B</italic><italic>.</italic> Biliary Intraepithelial neoplasia in non-biliary cirrhosis-report from 100 explanted livers: a single center experience. Clin Pathol. 2019;12:2632010X19876934. DOI: 10.1177/2632010X19876934.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>