<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Archiving and Interchange DTD v1.4 20241031//EN" "https://jats.nlm.nih.gov/archiving/1.4/JATS-archive-oasis-article1-4-mathml3.dtd">
<article xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xsi:noNamespaceSchemaLocation="https://jats.nlm.nih.gov/archiving/1.4/xsd/JATS-archive-oasis-article1-4-mathml3.xsd" article-type="research-article" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Клиническая и экспериментальная морфология</journal-title></journal-title-group><issn publication-format="print">2226-5988</issn><issn publication-format="electronic">2686-6749</issn><publisher><publisher-name xml:lang="ru">ООО &quot;Группа МДВ&quot;</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.31088/CEM2025.14.2.27-35</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Научная статья</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="ru">Выявление гипоксией индуцируемого фактора в первично-множественных злокачественных новообразованиях почки и предстательной железы</article-title></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-2433-8228</contrib-id><name><surname>Мыльников</surname><given-names>Артем Михайлович</given-names></name><bio><p>ассистент кафедры патологической анатомии (ФГБОУ ВО Саратовский государственный медицинский университет имени В.И. Разумовского Минздрава России)</p></bio><email>artyom-mylnikov@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-0503-6486</contrib-id><name><surname>Бучарская</surname><given-names>Алла Борисовна</given-names></name><bio><p>доктор биологических наук; руководитель центра коллективного пользования экспериментальной онкологии (ФГБОУ ВО Саратовский государственный медицинский университет имени В.И. Разумовского Минздрава России)</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-7399-9204</contrib-id><name><surname>Мудрак</surname><given-names>Дмитрий Андреевич</given-names></name><bio><p>ассистент кафедры патологической анатомии (ФГБОУ ВО Саратовский государственный медицинский университет имени В.И. Разумовского Минздрава России)</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-8834-1536</contrib-id><name><surname>Маслякова</surname><given-names>Галина Никифоровна</given-names></name><bio><p>доктор медицинских наук, профессор; заведующая кафедрой патологической анатомии (ФГБОУ ВО Саратовский государственный медицинский университет имени В.И. Разумовского Минздрава России)</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"></xref></contrib></contrib-group><aff id="aff1"><city>Саратов</city><country>Россия</country><institution>ФГБОУ ВО Саратовский государственный медицинский университет имени В.И. Разумовского Минздрава России</institution></aff><author-notes><fn fn-type="coi-statement"><p>Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.</p></fn></author-notes><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2025-03-31"><day>31</day><month>03</month><year>2025</year></pub-date><volume>14</volume><issue>2</issue><fpage>27</fpage><lpage>35</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2024-09-06"><day>06</day><month>09</month><year>2024</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2024-12-02"><day>02</day><month>12</month><year>2024</year></date></history><permissions><copyright-statement>© Мыльников А. М., Бучарская А. Б., Мудрак Д. А., Маслякова Г. Н., 2025</copyright-statement><copyright-year>2025</copyright-year><copyright-holder>Мыльников А. М., Бучарская А. Б., Мудрак Д. А., Маслякова Г. Н.</copyright-holder></permissions><self-uri xlink:href="http://cem-journal.ru/index.php/cem/article/view/307/258" xlink:title="URL">http://cem-journal.ru/index.php/cem/article/view/307/258</self-uri><abstract><p><italic>Введение.</italic> Фактор, индуцируемый гипоксией, активирует транскрипцию генов, которые участвуют в важнейших механизмах биологии злокачественных новообразований, включая ангиогенез, выживание клеток, метаболизм глюкозы и инвазивный рост опухоли. Цель исследования – изучить уровень иммуногистохимической реакции гипоксией индуцируемого фактора 1 (HIF-1) в первично-множественных злокачественных новообразованиях почки и предстательной железы с проведением сравнительной оценки с реакцией в одиночных опухолях данных локализаций.</p><p><italic>Материалы и методы. </italic>Исследование проведено с использованием архивных образцов биопсии пациентов, находившихся на стационарном лечении в НИИ фундаментальной и клинической уронефрологии Саратовского ГМУ им. В.И. Разумовского в период 2012–2020 годов. Проведен анализ историй болезни пациентов с последующим поиском гистологических образцов тканей и оценкой их морфологических, морфометрических и иммуногистохимических характеристик.</p><p><italic>Результаты.</italic><bold> </bold>За период 2012–2020 годов выявлено 58 случаев первично-множественных злокачественных новообразований с поражением почки и предстательной железы. Повышение уровня маркера HIF-1α в 2 раза отмечалось при сочетании светлоклеточного почечно-клеточного рака G1, G2 с ацинарной аденокарциномой предстательной железы 6–7 баллов по шкале Глисона.</p><p>В первично-множественных злокачественных новообразованиях, в состав которых входил светлоклеточный почечно-клеточный рак G3, G4, наблюдалось уменьшение реакции на HIF-1α по сравнению с первично-множественными злокачественными новообразованиями, включающими высокодифференцированный почечно-клеточный рак (G1, G2), и нарастание по сравнению с одиночным почечно-клеточным раком. При этом в ацинарной аденокарциноме предстательной железы изменения в уровне HIF-1α не обнаружены.</p><p><italic>Заключение.</italic><bold> </bold>Повышение уровня HIF-1 в первично-множественных злокачественных новообразованиях оказывает потенцирующее действие на прогрессирование развития рака предстательной железы при первично диагностируемых высокодифференцированных формах (G1, G2) светлоклеточного почечно-клеточного рака. Снижение уровня HIF-1 в низкодифференцированных формах (G3, G4) светлоклеточного почечно-клеточного рака сочетается со стабильной реакцией в опухолевых клетках рака предстательной железы.</p></abstract><kwd-group><kwd>первично-множественные злокачественные новообразования</kwd><kwd>рак почки</kwd><kwd>рак предстательной железы</kwd><kwd>гипоксией индуцируемый фактор</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement>Исследование выполнено при финансовой поддержке Саратовского государственного медицинского университета им. В.И. Разумовского в рамках научного проекта No SSMU-2022-011.</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body><p><bold>Введение</bold></p><p>Гипоксией индуцируемый фактор 1 (HIF-1) активирует транскрипцию генов, которые участвуют в важнейших аспектах регуляции жизнедеятельности злокачественных клеток, включая ангиогенез, пролиферацию, метаболизм глюкозы, апоптоз и аутофагию, уклонение от эффекторного воздействия иммунной системы, развитие резистентности к химотерапии, активацию опухолевых стволовых клеток. Внутриопухолевая гипоксия и генетические изменения могут приводить к повышению уровня HIF-1, который коррелирует с повышенной смертностью пациентов при различных вариантах злокачественных новообразований. Гипоксия способствует апоптозу как в нормальных, так и в опухолевых клетках [1]. Однако гипоксические условия в микроокружении опухоли наряду с накоплением генетических изменений (мутаций) часто способствуют избыточной продукции HIF-1 [2].</p><p>HIF-1 состоит из регулируемой кислородом альфа-субъединицы (HIF-1α) и конститутивно экспрессируемой бета-субъединицы ARNT (HIF-1β). Стабильность HIF-1α, а также активность транскрипции зависят от уровня кислорода. Альфа-субъединица образует гетеродимер с бета-субъединицей [2].</p><p>Недавние достижения позволили изучить центральную роль HIF-1α в развитии и прогрессировании рака предстательной железы (РПЖ). В метаанализе, проведенном M.И. Huang et al. (2018), исследована связь повышения уровня HIF-1α с прогрессированием рака предстательной железы. Уровень выявления белка HIF-1α в РПЖ был значительно выше, чем в незлокачественных тканях предстательной железы. Авторы считают, что иммуногистохимическое выявление HIF-1α является потенциально диагностическим биомаркером РПЖ и может быть применено для неинвазивного мониторинга прогрессирования РП у пациентов [3].</p><p>В отличие от многих типов опухолей HIF-1α оказывает противоположный эффект на морфогенез светлоклеточного почечно-клеточного рака (ПКР), действуя как опухолевый супрессор [4].</p><p>Цель исследования – провести сравнительный анализ уровня гипоксией индуцируемого фактора 1 (HIF-1) в гистологических образцах светлоклеточного почечно-клеточного рака и ацинарной аденокарциномы предстательной железы, входящих в состав первично-множественных злокачественных новообразований (ПМЗН) и одиночных злокачественных новообразований (ОЗН) данных локализаций.</p><p><bold>Материалы и методы</bold></p><p>Исследование проведено с использованием архивных образцов биопсии пациентов, находившихся на стационарном лечении в НИИ фундаментальной и клинической уронефрологии Саратовского ГМУ им. В.И. Разумовского в период 2012–2020 годов. Все исследуемые биопсийные образцы были морфологически верифицированы. Пациенты разделены на три исследуемые группы.</p><p>В первую группу вошли пациенты с ПМЗН почки и предстательной железы. Основанием для включения в указанную группу послужили следующие критерии.</p><p>Опухоли относятся к разной гистологической группе. Исключена вероятность метастазов первичной опухоли.</p><p>Морфологический тип опухоли почки представлен светлоклеточным почечно-клеточным раком предстательной железы – ацинарной аденокарциномой.</p><p>Пациенту ранее не проводилось лечение онкологических заболеваний (для исключения лечебного патоморфоза опухолей).</p><p>В две группы сравнения были включены пациенты с одиночными опухолями предстательной железы (вторая группа) и почки (третья группа) с соблюдением следующих условий.</p><p>1. Опухоль является первичным одиночным злокачественным новообразованием с исключенным лечебным патоморфозом в анамнезе.</p><p>2. Морфологический тип одиночных опухолей совпадает с морфологическим типом ПМЗН.</p><p>Для дифференцировки синхронности и метахронности развития ПМЗН применялись правила в соответствии с классификацией IACR/IARC (International Agency for Research on Cancer), которые предполагают диагностику синхронных опухолей, диагностированных в интервале менее 6 месяцев (или метахронных – более 6 месяцев), если они локализуются в разных анатомических областях [5].</p><p>Материал опухолей предстательной железы и почки исследовался тотально, опухоль преимущественно располагалась в периферических отделах предстательной железы и почки, для иммуногистохимического исследования выбраны участки с сохранными опухолевыми узлами, где находились жизнеспособные опухолевые клетки.</p><p>Гистологические срезы толщиной 4 мкм, окрашенные гематоксилином и эозином, исследованы при помощи светового микроскопа Leica DM1000 (Leica, Германия) и микровизора проходящего света µVizo-103 (АО «ЛОМО», Россия).</p><p>Для оценки количественных показателей опухолевой ткани проводилась цифровая фотосъемка (цифровая камера для микроскопа C-mex-10 pro, ООО «МедТехникаПоинт», Россия) гистологических препаратов. Полученные фотографии импортировались в электронный анализатор изображения – программу ImageView 2.5.2 (США), с помощью которой проводились фотофиксация всей площади среза и измерение морфометрических показателей в микрометрах. Измерения опухолевых клеток включали в себя длину и ширину ядра, длину и ширину клетки, площадь ядра, площадь клетки, площадь цитоплазмы, ядерно-цитоплазматическое отношение, количество клеток с вакуолизированной цитоплазмой.</p><p>Для иммуногистохимического исследования использовали антитела HIF-1α (Arg575-Asn826) и ARNT Ab (DF6154) (табл. 1). Окрашивание проводили при помощи мультимерной безбиотиновой системы детекции REVEAL – Biotin-Free Polyvalent DAB (Spring Bioscience Corp., США). Для оценки специфичности иммунного окрашивания в каждом случае проводили отрицательный контроль (обработка срезов вместо первичных антител неиммунным буфером), результатом чего было отсутствие специфического иммунного окрашивания.</p><p>Оценку иммуногистохимической реакции HIF-1α и ARNT проводили в соответствии со стандартной методикой для данных маркеров, описанной Kim C.M. et al. [6]. На срезах с ИГХ окрашиванием подсчитывали средний процент клеток c реакцией маркера в 30 полях зрения. Реакцию на HIF-1α и ARNT оценивали полуколичественно по следующей схеме оценки: 0 –отрицательная; + (&lt;10% клеток с реакцией) – слабая; ++ (10–50% клеток с реакцией) – умеренная; +++ (&gt;50% клеток с реакцией) – выраженная [6].</p><p>Данное исследование было проведено с использованием иммуногихимических методик идентификации маркеров HIF-1α и ARNT. Флуоресцентная гибридизация <italic>in situ</italic> не проводилась.</p><p>Полученные данные были подвергнуты статистической обработке в программном обеспечении SPSS 17.0 (SPSS: An IBM Company. США). Нормальность распределения признаков в группах определяли с помощью критерия Шапиро‒Уилка. Распределение признаков не соответствовало нормальному, поэтому для оценки наличия статистически значимых отличий использовался непараметрический критерий Манна–Уитни (U-тест). Количественные данные описывались посредством медианы, минимального и максимального значений, 1-го и 3-го квартилей. В исследовании была проведена коррекция на множественное сравнение Бонферрони. Статистически значимым считался результат, если вероятность отвергнуть нулевую гипотезу об отсутствии различий не превышала 0,833% (р&lt;0,00833).</p><p>Дизайн исследования одобрен комитетом по биомедицинской этике Саратовского государственного медицинского университета имени В.И. Разумовского Минздрава России (протокол № 7 от 01.02.2022).</p><p><bold>Результаты</bold></p><p>За период 2012–2020 годов выявлено 58 случаев ПМЗН с поражением почки и предстательной железы. Синхронное развитие отмечалось у восьми пациентов (8,6%), метахронное – у 50 (91,4%).</p><p>Возрастное распределение пациентов с ПМЗН почки и предстательной железы на момент постановки диагноза показало, что превалирующим контингентом являются лица в возрасте от 60 до 70 лет – 27 человек (46,6%). Средний возраст составил 68 лет.</p><p>Принято, что для каждой опухоли в составе ПМЗН (в данном случае рак почки – рак предстательной железы) стадия определяется самостоятельно [7]. Таким образом, все случаи были разделены на три подгруппы. Первую подгруппу составили 23 пациента (40,8%) с локализованными стадиями по системе TNM: I–I, I–II, II–II; во вторую подгруппу вошли 25 пациентов (42,2%) с местно-распространенными стадиями по TNM I–III, II–III, III–III; третью подгруппу составили 10 пациентов (17%) с запущенным, диссеминированным опухолевым процессом – стадии по TNM I–IV, II–IV, III–IV, IV–IV.</p><p>У 43 пациентов в комбинации рак почки – рак предстательной железы первично развивался рак почки, затем рак предстательной железы. Обе опухоли при данной последовательности возникновения диагностировались преимущественно на стадиях Т1–Т2.</p><p>При первичном развитии рака в предстательной железе (15 пациентов) было отмечено, что новообразование диагностировалось с одинаковой частотой на разных стадиях опухолевого процесса, тогда как рак почки, выявленный впоследствии, выявлялся, как правило, на стадиях Т1–Т2.</p><p>При сравнении морфометрических характеристик ПМЗН предстательной железы и почки с единичными опухолями тех же локализаций было выявлено уменьшение всех исследуемых параметров опухолевых клеток. В опухолях предстательной железы при ПМЗН уменьшались следующие показатели: площадь клетки – в 1,25 раза, ядра – в 1,2 раза, цитоплазмы – в 1,1 раза, количество клеток с вакуолизированной цитоплазмой – в 1,6 раза, количество дву- и многоядерных клеток – в 1,4 раза (табл. 2).</p><p>При оценке результатов иммуногистохимического исследования проводилось попарное сравнение уровня реакции на HIF-1α и ARNT в ПМЗН с аналогичной одиночной опухолью.</p><p>Уровень цитоплазматичской и ядерной реакции на HIF-1α в ПМЗН преобладал над уровнем реакции на HIF-1α в ОЗН почки и предстательной железы.</p><p>Повышение уровня реакции в опухолевых клетках в 2 раза наблюдалось при сочетании светлоклеточного ПКР G1, G2 с ацинарной аденокарциномой предстательной железы 6–7 баллов по шкале Глисона.</p><p>В ПМЗН, включающих светлоклеточный ПКР G3–G4, наблюдалось уменьшение реакции на HIF-1α по сравнению с ПМЗН с ПКР G1–G2 и нарастание ядерной реакции по сравнению с одиночным ПКР G3–G4. При этом в ацинарной аденокарциноме предстательной железы изменения в экспрессии HIF-1α не обнаружены (табл. 3, рис. 1 A–D). В группе ПМЗН данный механизм обусловлен снижением уровня реакции HIF-1α в низкодифференцированных формах светлоклеточного ПКР G3-G4.</p><p>При сравнении уровня реакции ARNT в группах с ПМЗН и ОЗН выявлено полное отсутствие ядерной реакции в обеих группах, а уровень цитоплазматической реакции не отличался (табл. 4, рис. 1 E–H).</p><p><bold>Обсуждение</bold></p><p>Уменьшение морфометрических показателей в опухолях предстательной железы при ПМЗН может быть обусловлено влиянием опухолевого микроокружения и увеличением количества злокачественных нейроэндокринных клеток, которые отличаются уменьшенными показателями по сравнению с типичными опухолевыми клетками РПЖ. Нейроэндокринные клетки являются андрогеннезависимыми и также способны синтезировать HIF-1α, что ухудшает прогноз для пациента даже с учетом планируемой андрогенкорректирующей терапии [8, 9]. В опухолях почек существенные отличия не обнаружены [10].</p><p>Полученные данные уровня иммуногистохимической реакции HIF-1α в одиночных злокачественных новообразованиях почки согласуются с литературными источниками. Повышение уровня реакции в высоко- и умеренно- дифференцированных формах ПКР (G1, G2) и снижение уровня реакции в низкодифференцированных формах (G3,4) свидетельствуют о мутациях в генах, кодирующих синтез данного фактора, который в ПКР играет роль антионкогена [11, 12]. В злокачественных новообразованиях предстательной железы HIF-1α, напротив, является активатором прогрессирования роста опухоли, и повышение реакции наблюдается при нарастании степени злокачественности (низкодифференцированные формы с оценкой по шкале Глисона ≥8) [13].</p><p>Повышение уровня реакции в опухолевых клетках ПКР G1, G2 с ацинарной аденокарциномой предстательной железы 6–7 баллов по шкале Глисона в 2 раза обусловлено системным влиянием HIF-1α, продуцируемого опухолевыми клетками почки, на стимуляцию онкогенеза в железистом эпителии предстательной железы.</p><p>Снижение степени дифференцировки клеток в группе ПМЗН обусловлено нарушением синтеза биологически активных веществ, в том числе HIF-1α, играющего роль антионкогена в опухолевых клетках почки, однако за счет наличия в организме аденокарциномы предстательной железы иммуногистохимическая реакция HIF-1α возрастала по сравнению таковой при одиночном почечноклеточном раке, где происходило её снижение.</p><p>ARNT является конститутивным синтезируемым веществом, связывающим HIF-1α. Этот комплекс импортируется в ядро и активирует транскрипцию широкого спектра генов, направленных на устранение гипоксических условий в ткани. В опухолевых клетках отсутствие ядерной иммуногистохимической реакции данного маркера, но наличие цитоплазматической позволяет судить о присутсвии свободного ARNT в цитоплазме опухолевых клеток, при связывании с HIF-1α он перестает выявляться иммуногистохимически, так как образует комплексное соединение с HIF-1α [14, 15].<italic> </italic></p><p><bold>Заключение</bold></p><p>Уровень цитоплазматичской и ядерной реакции HIF-1α в первично-множественных злокачественных новообразованиях преобладал над уровнем HIF-1α в одиночных злокачественных новообразованиях почки и предстательной железы. Повышение уровня иммуногистохимической реакции в опухолевых клетках в 2 раза наблюдалось при сочетании светлоклеточного почечно-клеточного рака G1, G2 с ацинарной аденокарциномой предстательной железы 6–7 баллов по шкале Глисона.</p><p>В первично-множественных злокачественных новообразованиях, включающих светлоклеточный почечно-клеточный рак G3–G4, наблюдались уменьшение HIF-1α по сравнению с первично-множественными злокачественными новообразованиями с почечно-клеточным раком G1–G2 и нарастание ядерной экспрессии по сравнению с одиночным почечно-клеточным раком G3–G4. При этом в ацинарной аденокарциноме предстательной железы изменения в реакции HIF-1α не обнаружены.</p></body><back><ref-list><ref id="ref1"><label>1</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Vaupel P, Mayer A.</italic> Hypoxia in cancer: significance and impact on clinical outcome. Cancer Metastasis Rev. 2007;26(2):225–39. DOI: 10.1007/s10555-007-9055-1.</mixed-citation></ref><ref id="ref2"><label>2</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Harris AL.</italic> Hypoxia – a key regulatory factor in tumour growth. Nat Rev Cancer. 2002;2(1):38–47. DOI: 10.1038/nrc704.</mixed-citation></ref><ref id="ref3"><label>3</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Huang M, Du H, Zhang L, Che H, Liang C.</italic> The association of HIF-1α expression with clinicopathological significance in prostate cancer: a meta-analysis. Cancer Manag Res. 2018;10:2809–16. DOI: 10.2147/CMAR.S161762.</mixed-citation></ref><ref id="ref4"><label>4</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Schödel J, Grampp S, Maher ER, Moch H, Ratcliffe PJ, Russo P et al.</italic> Hypoxia, hypoxia-inducible transcription factors, and renal cancer. Eur Urol. 2016;69(4):646–57. DOI: 10.1016/j.eururo.2015.08.007.</mixed-citation></ref><ref id="ref5"><label>5</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Isaacs JS, Jung YJ, Mole DR, Lee S, Torres-Cabala C, Chung YL et al.</italic> HIF overexpression correlates with biallelic loss of fumarate hydratase in renal cancer: novel role of fumarate in regulation of HIF stability. Cancer Cell. 2005;8(2):143–53. DOI: 10.1016/j.ccr.2005.06.017.</mixed-citation></ref><ref id="ref6"><label>6</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Kim CM, Vocke C, Torres-Cabala C, Yang Y, Schmidt L, Walther M et al. </italic>Expression of hypoxia inducible factor-1alpha and 2alpha in genetically distinct early renal cortical tumors. J Urol. 2006;175(5):1908–14. DOI: 10.1016/S0022-5347(05)00890-6.</mixed-citation></ref><ref id="ref7"><label>7</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Selak MA, Armour SM, MacKenzie ED, Boulahbel H, Watson DG, Mansfield KD et al.</italic> Succinate links TCA cycle dysfunction to oncogenesis by inhibiting HIF-alpha prolyl hydroxylase. Cancer Cell. 2005;7(1):77–85. DOI: 10.1016/j.ccr.2004.11.022.</mixed-citation></ref><ref id="ref8"><label>8</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Monsef N, Soller M, Panagopoulos I,</italic><italic> </italic><italic>Abrahamsson PA.</italic> HIF1α isoforms in benign and malignant prostate tissue and their correlation to neuroendocrine differentiation. BMC Cancer. 2010;10:385. DOI: 10.1186/1471-2407-10-385.</mixed-citation></ref><ref id="ref9"><label>9</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Chen Z, Han F, Du Y, Shi H, Zhou W.</italic> Hypoxic microenvironment in cancer: molecular mechanisms and therapeutic interventions. Signal Transduct Target Ther. 2023;8(1):70. DOI: 10.1038/s41392-023-01332-8.</mixed-citation></ref><ref id="ref10"><label>10</label><mixed-citation><italic>Мыльников А.М., Маслякова Г.Н.</italic> Эпидемиологический обзор первично-множественных злокачественных новообразований предстательной железы, почки и мочевого пузыря. Онкоурология. 2023;19(1):160–168. DOI: 10.17650/1726-9776-2023-19-1-160-168.</mixed-citation></ref><ref id="ref11"><label>11</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Raval RR, Lau KW, Tran MG, Sowter HM, Mandriota SJ, Li JL et al.</italic> Contrasting properties of hypoxia-inducible factor 1 (HIF-1) and HIF-2 in von Hippel-Lindau-associated renal cell carcinoma. Mol Cell Biol. 2005;25(13):5675–86. DOI: 10.1128/MCB.25.13.5675-5686.2005.</mixed-citation></ref><ref id="ref12"><label>12</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Shen C, Beroukhim R, Schumacher SE, Zhou J, Chang M, Signoretti S et al.</italic> Genetic and functional studies implicate HIF1α as a 14q kidney cancer suppressor gene. Cancer Discov. 2011;1(3):222–35. DOI: 10.1158/2159-8290.CD-11-0098.</mixed-citation></ref><ref id="ref13"><label>13</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Keith B, Johnson RS, Simon MC.</italic> HIF1α and HIF2α: sibling rivalry in hypoxic tumour growth and progression. Nat Rev Cancer. 2011;12(1):9–22. DOI: 10.1038/nrc3183.</mixed-citation></ref><ref id="ref14"><label>14</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Wenger RH, Stiehl DP, Camenisch G.</italic> Integration of oxygen signaling at the consensus HRE. Sci STKE. 2005;2005(306):re12. DOI: 10.1126/stke.3062005re12.</mixed-citation></ref><ref id="ref15"><label>15</label><mixed-citation xml:lang="en"><italic>Schödel J, Oikonomopoulos S, Ragoussis J, Pugh CW, Ratcliffe PJ, Mole DR.</italic> High-resolution genome-wide mapping of HIF-binding sites by ChIP-seq. Blood. 2011;117(23):e207–17. DOI: 10.1182/blood-2010-10-314427.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>